Lingkungan dan kondisi fisiologis yang mempengaruhi Tetrahymena sp. infeksi pada guppies, Poecilia reticulate Peters
M Pimenta Leibowitz1, R Ariav2 dan D Zilberg3
• Hazeva Pusat Penelitian dan Pengembangan, Yakub Blaustein Lembaga Penelitian Gurun, Ben-Gurion Universitas Negev, Boqer Kampus Sede, Israel
• Aquavet Technologies, Yaacov Zichron, Israel
• Yakub Blaustein Lembaga Penelitian Gurun, Ben-Gurion University of merebut, Kampus Boqer Sede, Israel
Abstrak
Infeksi parasit yang disebabkan oleh Tetrahymena sp. Merupakan masalah serius di guppies, Poecilia reticulata. Tetrahymena diisolasi dari lesi kulit guppy yang terinfeksi secara alami dalam budidaya komersial pertanian, kultur in vitro dan digunakan dalam
eksperimental infeksi berikutnya. Selain guppies, angelfish, Pterophyllum scalare, platyfish, Xiphophorus maculates, dan neontetra, Paracheirodon innesi, adalah rentan, sedangkan nila (Oreochromis niloticus • O. aureus) adalah resisten. Ciliata memiliki afinitas yang tinggi
terhadap kematian ikan. Abrasi kulit tidak mempengaruhi infeksi, tetapi ikan dengan penyakit gelembung gas memiliki dampak infeksi jauh lebih tinggi daripada ikan non infeksi. Infeksi secara signifikan lebih tinggi saat ikan terkena tingkat beban amonia yang tinggi, organik tinggi
dan suhu air rendah. Dalam kondisi pengiriman, infeksi meningkat secara signifikan. Pemulihan penuh dicapai pada kepadatan ikan rendah. Hasil menunjukkan bahwa lingkungan miskin dan fisiologis meningkatkan kondisi infeksi dengan Tetrahymena sp.
Kata kunci: Ciliata, ikan, Guppy, infeksi, pemulihan, Tetrahymena.
Pendahuluan
Guppy, Poecilia reticulata Peters, adalah salah satu spesies ikan hias yang paling populer dan diperdagangkan secara luas di seluruh dunia. Di Singapura, jumlah ekspor tahunan guppies dicatat sebesar $ 13 juta, hampir 15% dari total ekspor ikan hias pada tahun 1996
(Loo, Ling & Lim 1998). Di Israel, produksi ikan hias tropis adalah industri dengan nilai pertumbuhan diperkiraan sebesar 2,7 juta Euro di Tahun 2004 dan guppies mewakili sekitar 70% ikan dihasilkan (O. Carmeli, Agrexco Carmel, Komunikasi Perorangan).
Para protozoa mata berbulu, Tetrahymena sp., adalah penyebab utama penyakit Yang mempengaruhi guppies terutama agen dan umumnya dikenal sebagai 'guppykiller
parasit '. Genus Tetrahymena mencakup terutama yang hidup bebas holotrichous, umumnya saprozoic siliata, yang memakan bahan organik dan bakteri di habitat alam, dan juga dianggap menginfeksi ikan yang ditekankan oleh kondisi lingkungan yang merugikan (Lom, 1995). Ikan yang terinfeksi lesu dan biasanya ditandai dengan lesi putih pada permukaan tubuh dan sirip terkikis (Imai, Tsurimaki, Goto, Wakita & 2000 Hatai; Chukanhom Hatai,, Lawhavinit, Hanjavanit, Kunitsune & 2001 Imai; Shenberg 2003). Selain guppies, spesies lain telah dilaporkan rentan terhadap parasit ini. Ferguson, Hicks, Lynn, Ostland & Bailey (1987) melaporkan Ulkus tengkorak salmon Atlantik, Salmo salar L., terkait dengan Tetrahymena sp. Tinggi kematian di laboratorium-ikan zebra dipertahankan, Danio rerio (Hamilton), telah dikaitkan dengan parasit (Astrofsky, Schech, Sheppard, Obenschain, Chin, Kacergis, Laver, Bartholomew & Fox 2002). Pada infeksi eksperimental, pristella, Pristella maxillaries (Ulrey), neontetra, Paracheirodon innesi (Myers), dan cherry barbs, Puntius titteya Diraniyagala, rentan terhadap infeksi dengan Tetrahymena pyriformis (Ponpornpisit, Endo & Murata 2000). Konvensional perawatan terhadap infeksi protozoa yang efektif terhadap dangkal, tetapi tidak
infeksi sistemik dengan Tetrahymena sp. Ponpornpisit, Endo & Murata (2001) melaporkan bahwa gabungan aplikasi immuno-stimulan dan garam mandi penyakit diobati secara efektif.
Infeksi dengan Tetrahymena sp. Merupakan masalah yang serius dalam produksi Guppy di Thailand (Ponpornpisit et al. 2000; Hatai et al. 2001). Sebuah parah infeksi sistemik di sebuah peternakan komersial di selatan Israel (I. Paperna, Universitas Ibrani
Yerusalem, komunikasi pribadi) yang dipimpinnya kering. Dalam studi ini, infeksi dan pemulihan Tetrahymena sp. yang belajar di bawah berbeda kondisi, menggunakan isolat yang diperoleh dari terinfeksi guppies di sebuah peternakan komersial. Sensitivitas jenis ikan lainnya juga dievaluasi.
Bahan dan metode
Ikan
Guppies, panjang 2,3-2,8 cm, diperoleh dari budidaya pertanian komersial di Lembah Arava, Israel. Setibanya di laboratorium, mereka diperiksa untuk menentukan bahwa mereka yang jelas tentang Tetrahymena sp. dan disimpan di dalam sebuah tangki L 130. Lain diuji spesies, termasuk ikan nila (hibrida Oreochromis• aureus O. niloticus) 2,3-2,5 cm, angelfish, Pterophyllum scalare (Lichtenstein), 2,2-2,3 cm panjang, platyfish, Xiphophorus maculates (Gunther), 2,5-2,6 cm panjang dan neontetra, Paracheirodon innesi (Myers) 2,1-2,3 cm, juga diperoleh dari pertanian komersial di Tanah Negeb dan disimpan dalam 30 – L akuarium. Tank holding dan wadah disediakan dengan filter biologis dan dibersihkan mingguan
menyedot dan mengganti setengah dari air dengan dechlorinated air segar, yang diperoleh dengan menggunakan 50 mg L) 1 natrium tiosulfat pentahydrate (Willam Blythe, Accrington, Inggris).
Spesies ikan hias diberi makan sekali sehari dengan makanan komersial ikan hias (Tropical Orange, Tzemah, Israel) dan ikan diberi makan makanan komersial nila (Diet Nomor 15, Pabrik Miluot, R.M.C Ltd, Zvi Ramat, Israel). Fotoperiodik itu ditetapkan pada 12:12 cahaya h: siklus gelap dan suhu tetap di 24 1 C. oksigen terlarut diukur dengan sebuah YSI 52 meter oksigen terlarut (YSI Inc, Kuning Springs, OH, USA) dan pH diukur dengan pH meter (EUTECH Instruments, Ayer Rajah Crescent, Singapura). Amonia dan nitrit adalah diukur dengan menggunakan kit kolorimetri (Merck, Darmstadt, Jerman). Oksigen tingkat dipertahankan di atas 8 mg L) 1, pH 7.6 dan amonia dan Konsentrasi nitrit disimpan di bawah 0,5 mg L-1.
Karakterisasi morfologi Tetrahymena sp.
Tetrahymena sp. dari ikan terinfeksi dan dari kultur in vitro dan diamati di bawah mikroskop cahaya dalam basah mount. Lebih lanjut karakterisasi morfologi, termasuk ukuran pengukuran, analisis yang ciliature dan aparat bukal, dan pewarnaan perak menggunakan Klein dan Chatton-Lwoff prosedur (Foissner 1991), dilakukan pada organisme yang dibudidayakan. Pewarnaan Hematoksilin (Botes, Basson & Van As 2001) digunakan untuk mengungkapkan aparat nuklir.
Isolasi dan pemeliharaan Tetrahymena sp. in vitro
Ikan yang terinfeksi dengan Tetrahymena sp. Diperoleh dari sebuah peternakan komersial di Israel utara. Ikan yang lesu, ditampilkan karakteristik kulit keputihan lesi dan sirip terkikis, dan parasit itu diamati pada kulit dan sirip bawah cahaya mikroskop. Tetrahymena sp. dari lesi kulit dipindahkan ke medium ATCC 357 (ATCC, Manassas, VA, Amerika Serikat) dengan penisilin G (3 mg L) -1) dan streptomisin sulfat (3 mg L) 1) dalam cawan petri dan diinkubasi di 25 C. Subkultur mingguan dilakukan dengan mentransfer 200 25 µ mL segar menengah. Sebuah Tetrahymena axenic sp. Budaya (Bagian angka 2 hingga 4) diperoleh dalam 2-4 minggu. Para siliata telah dialihkan kepada sel 24-baik budaya cluster (Corning Incorporated, Corning, NY, USA) dan subkultur mingguan mentransfer 10-30 Februari µ mL ATCC steril 357 medium kultur tanpa antibiotik. Tetrahymena sp. mencapai kepadatan sekitar 35 000 siliata mL) 1 setelah 1 minggu, sebagaimana ditentukan dengan menghitung dengan haemocytometer (Neubauer Perbaikan, Merek Ltd, Marienfeld, Jerman). Subkultur dilakukan dalam kondisi steril di biologi kap (ADS Laminar, CEDEX, Perancis).
Kondisi Eksperimental
Semua percobaan dilakukan dengan guppies kecuali dinyatakan secara khusus. Percobaan dilakukan di akuarium 7-L diisi sampai 6 L, 1-L gelas penuh 800 mL, atau cawan Petri diisi dengan 40 mL (sebagaimana ditentukan untuk setiap percobaan), dalam tiga hingga enam ulangan di 25 C, dengan menggunakan Tetrahymena sp. in vitro-berbudaya. Tidak biofiltrasi ditambahkan dan ikan tidak diberi makan selama sidang (2-5 hari), kecuali dinyatakan lain. Aquaria dan gelas yang diaerasi dengan batu udara. Dalam gelas, batu udara ditempatkan sekitar 5 cm di bawah tingkat air dan aerasi harus cukup lembut untuk menghindari aduk berlebihan. Parameter kualitas air (termasuk amonia, nitrit dan tingkat oksigen) adalah diukur pada akhir percobaan. Tambahan parameter kualitas air, termasuk oksigen kimia permintaan (COD), total padatan tersuspensi (TSS) kekeruhan dan, yang dianalisis dalam percobaan memeriksa efek materi organik pada infeksi. Semua analisis dilakukan sesuai dengan standar metode untuk pemeriksaan air dan air limbah (APHA 1995).
Pemeriksaan infeksi
Goresan kulit dari sekitar 1 cm2 yang lembut dikumpulkan dari sisi kiri lateral ikan menggunakan gelas cover-slip, dan diperiksa di bawah mikroskop cahaya atas kehadiran sp Tetrahymena bergerak lambat., vakuola makanan yang mengandung pigmen (Gambar 1a). Ini fitur menunjukkan bahwa Tetrahymena sp. telah memakan sel-sel pigmen inang, dan oleh karena itu mewakili bentuk parasit (Ponpornpisit et al. 2000). Infeksi dianggap hanya dalam ikan hidup.
Kerentanan spesies ikan yang berbeda
Kerentanan ikan nila, platyfish, angelfish dan neontetra untuk Tetrahymena sp. telah diuji dan dibandingkan dengan guppies. Ikan didedahkan untuk Tetrahymena sp. selama 24 jam, pada konsentrasi 10 000 mL siliata) 1 dalam cawan Petri 40-mL, dengan dan tanpa lembut dimakankan pada unggas seluas sekitar 1 cm2 kulit ikan 10 kali dengan sisi tumpul dar pisau bedah pisau. Untuk angelfish, 1-L dengan gelas penuh 60 mL air yang digunakan. Eksperimen dilakukan dalam rangkap tiga, dengan tiga ikan / ulangan. Ikan diperiksa untuk infeksi setelah 24 jam dan Mortalitas dicatat.
Pengaruh berbagai faktor infeksi
Pengaruh dari faktor yang berbeda, termasuk fisiologis, lingkungan dan lain eksternal parameter, pada kesuksesan infeksi diuji (Tabel 2). Dalam semua perawatan, ikan yang terkena siliata 100 mL) 1 dalam gelas 800-mL selama 48 jam dan diperiksa setiap hari selama infeksi, kecuali dinyatakan lain. Yang diuji kondisi dipertahankan di seluruh percobaan. Ikan kepadatan dan jumlah ulangan yang dirinci dalam Tabel 2.
Kulit cedera
Penyakit gelembung gas (GBD) Ikan didiagnosis dengan GBD oleh pengamatan gas emboli pada sirip dan insang bawah mikroskop cahaya, yang didatangkan dari sebuah peternakan komersial dan segera digunakan dalam infeksi eksperimental. Kelompok kontro terdiri dari ikan dari kami memegang kontainer.
Gambar 1: Tampilan ventral Tetrahymena sp. (Vakuola makanan) Dari gesekan kulit Guppy hidup menunjukkan mengandung pigmen (bar ¼ lm 40). (B) Dalam sp Tetrahymena vitro-berbudaya. (Perak Klein noda, bar 16 ¼ lm).
Amonia
Ikan yang terkena Ciliata pada 0, 1-2 dan 4-5 mg / g amonia. Sebuah konsentrasi 0 mg / g amonia diperoleh dengan menambahkan L 0,66 mL) 1 dari amonia detoxifier mengandung 2,05 m natrium hydroxymethanesulphonate (HOCH2SO3 Na) (Kordon Divisi Novalek Inc, Hayward, CA, USA). Untuk mendapatkan konsentrasi 4-5 mg / g amonia, solusi stok yang mengandung 10 mg / g dari NHþ4 ditambahkan pada konsentrasi L 1,25 mL) 1 (1 mL dalam 0,8 L). Sebuah konsentrasi 1-2 mg / g amonia dicapai oleh ammonia diekskresikan oleh ikan.
Suhu air
Ikan yang terkena Ciliata pada 16-17, 24-25 dan suhu 30-310 C. Suhu yang diatur dengan AC memberikan suhu kamar 18 C. Untuk mendapatkan suhu yang lebih tinggi 24-25 dan suhu 30-310 C, gelas yang tenggelam dalam wadah 100-L disertakan dengan pemanas akuarium (Guandong Risheng Group Co Ltd, Shenzhen, Cina).
Fotoperiodik
Ikan yang terkena Ciliata di kegelapan konstan dan dalam siklus: 12:12 h cahaya gelap.
Kedalaman air
Ikan yang terkena Ciliata pada volume air dan dalam wadah yang berbeda-ukuran: 1-L
gelas diisi dengan 800 ml air memberikan Kedalaman Air 11 cm dan akuarium 30 L diisi dengan volume yang sama memberikan kedalaman air 0,9 cm.
Bahan Organik
Lumpur dikumpulkan dari dua terendam biologis filter (4 L masing-masing), diambil dari tangki 130 L yang diisi dengan 50 ikan dengan berat 15-20 g masing-masing. COD, TSS dan kekeruhan dari nilai-nilai suspensi obyek aslinya organik adalah: 1.721,6 870,0 dan 444,0 mg L) 1, masing- masing. Suspensi ditambahkan pada 1% dan 10% (v / v) ke gelas tapi tidak terhadap perlakuan kontrol. COD, TSS dan tingkat kekeruhan diukur setelah 48 h.
Kondisi Pengiriman
Ikan yang terkena Ciliata dalam kantong polythene (29 ° 42 cm) diisi dengan 800 mL air, 0,66 mL L) 1 larutan Amquel, 2 L murni oksigen dan disegel (menurut prosedur yang biasa untuk pengiriman ikan hias). Untuk kontrol, 1-L gelas yang diisi dengan 800 mL air, 0,66 mL L) 1 larutan Amquel dan disuplai dengan aerasi. Kedua perlakuan tersebut ditempatkan dalam ditutup kotak styrofoam seluruh percobaan, seperti dalam prosedur pengiriman. Ikan diperiksa infeksi setelah 48 h.
Pemulihan singkat dari infeksi
Pemulihan ikan dari infeksi dengan Tetrahymena sp. diperiksa dalam berbagai ukuran dan berbentuk kontainer. Nai ve ikan terinfeksi dengan Tetrahymena sp. oleh paparan siliata 1000 mL) 1 selama 24 jam, dalam cawan Petri 40-mL, tiga ikan per piring, sebuah protokol infeksi yang dihasilkan 100%. ikan yang terinfeksi adalah menggenang dalam wadah 1-L dan delapan ikan sampel secara acak dan diperiksa untuk memverifikasi infeksi sukses. Ikan kemudian dibagi ke dalam berbagai ukuran kontainer di kepadatan ikan yang berbeda di dua terpisah percobaan (1 dan 2) sebagaimana tercantum dalam Tabel 4, dan diperiksa untuk infeksi setelah 1 minggu.
Analisis Statistik
Semua analisa statistik dilakukan dengan Sigma Stat (SPSS Inc, Chicago, IL, USA, 1992-1997) dan SPSS SPSS (Inc, 1989-1999). prevalensi yang infeksi dibandingkan dengan ANOVA satu arah. Pemulihan dari infeksi dianalisis dengan ANOVA pada peringkat (Tukey). Non-numerik parameter (persentase infeksi atau kematian) telah berubah (Arcsin x) untuk analisis statistik. Perbedaan itu dianggap signifikan pada P <0,05 atau sebagaimana lain.
Hasil
Karakteristik morfologi Tetrahymena sp.
Ciliata itu bulat untuk pyriform, rata-rata 41,7 4,29 21,7 2,48 Â • lm dalam ukuran (n ¼ Â 50), dengan ujung anterior menyempit. Masing-masing memiliki 25 Ciliata silia baris dan dua baris silia pasca-oral, merata spasi (Gbr. 1b). Sebuah macronucleus bola dengan berdiameter sekitar 6 lm adalah pusat diposisikan dan mikronukleus. Rongga itu terdiri dari tiga membranelles lisan pada kiri dan membrane bergelombang di sebelah kanan sisi rongga mulut. Ciliata tidak menampilkan ekor silia. Pergerakan Ciliata dalam air, seperti yang diamati di bawah mikroskop cahaya, mirip sepak bola spiral. Kerentanan spesies ikan yang berbeda untuk Tetrahymena sp.
Abraded Untreated
Control Exposed Control Exposed
Fish Infec. Mort. Infec. Mort. Infec. Mort. Infec. Mort.
Guppy 0 0 100 0 0 0 100 0
Tilapia 0 0 0 33.3 0 22.2 0 11.1
Angelfish 0 11.1 85.7 22.2 0 0 100 11.1
Platyfish 0 0 77.7 0 0 0 71.4 22.2
Neontetra 0 0 83.3 22.2 ND ND ND ND
Suseptibilitas dari spesies ikan yang berbeda disajikan pada Tabel 1. Prevalensi infeksi dan kematian relatif sama (P> 0,05) untuk guppi, angelfish, platyfish dan neontetra. Tilapia tidak terinfeksi oleh parasit. Abrasi kulit tidak mempengaruhi infeksi di salah satu spesies (P> 0,05). Ikan mati dari segala jenis , termasuk nila, secara konsisten dijajah oleh parasit.
Pengaruh faktor-faktor yang berbeda pada infeksi
Parameter kualitas air adalah hal serupa pada berbagai percobaan, kecuali di tempat menguji efek amonia dan bahan organik. Pada 48 jam, amonia dan tingkat nitrit adalah 1,0-2,0 dan 0,2-0,5 mg L) 1, dan kadar oksigen 7,5-8,5 mg L) 1. Prevalensi infeksi dibawah yang berbeda lingkungan dan kondisi fisiologis yang dirangkum pada Tabel 2. Kulit dimakankan pada unggas dan tidak mempengaruhi prevalensi infeksi pada 24 atau 48 jam, Infeksi meningkat secara signifikan antara 24 dan 48 jam. GBD memiliki signifikan yang berpengaruh terhadap prevalensi infeksi. Infeksi pada kedua perlakuan mengalami peningkatan signifikan antara 24 dan 48 jam dan perbedaan antara perawatan bertahan. Amonia memiliki pengaruh signifikan terhadap prevalensi infeksi. Pada 24 jam, infeksi secara signifikan lebih tinggi dalam gelas dengan 1,0-2,0 dan 4,0-5,0 mg / g ammonia. Infeksi tidak berubah secara signifikan pada 48 jam dan perbedaan antara perawatan bertahan.
Peningkatan bahan organik secara signifikan mempengaruhi prevalensi infeksi dan terjadi pada 48 jam. Ada peningkatan yang signifika antara 24 dan 48 jam pada semua perlakuan. Penambahan bahan organik berpengaruh nyata terhadap kualitas air (Tabel 3), yang tercermin dari COD tinggi tingkat per liter pada perawatan dengan 1% dan 10% bahan organik. TSS signifikan lebih tinggi dalam hal perlakuan 10% organik.
Meskipun signifikan berbeda, 1 dan 10% perawatan bahan organik lebih tinggi kekeruhan dibandingkan kontrol.
Suhu memiliki dampak yang signifikan terhadap prevalensi infeksi hanya pada 48 jam. Ikan terkena parasit pada suhu 16-17 C. Infeksi lebih tinggi terjadi pada suhu 24-25 dan 30-31 C. Infeksi secara signifikan meningkat antara 24 dan 48 jam pada suhu rendah (16-17 C).
Fotoperiodik berpengaruh nyata terhadap infeksi. Infeksi lebih rendah pada ikan disimpan di ruangan yang terang, dibandingkan dengan ikan yang disimpan di dalam ruangan yang gelap. Infeksi meningkat secara signifikan
antara 24 dan 48 jam di kedua perawatan. Pencahayaan untuk parasit pada kedalaman air sebesar 0,9 dan 11 cm tidak berpengaruh terhadap prevalensi infeksi.
Kondisi Pengiriman secara signifikan mempengaruhi prevalensi infeksi. Tingkat oksigen secara signifikan lebih tinggi dalam pengiriman dari pada control (14,4 mg L) 1 vs 8,4 mg L) 1 dan pH secara signifikan lebih rendah (6,6 vs 7,2. Parameter kualitas air lainnya yang serupa didua perlakuan, dengan 0 mg L) 1 amonia dan nitrit.
Pemulihan secara sepontan dari infeksi
Container sizes Fish densities(fish L)1) Replicates Recovery (%)
Trial 1
7-L aquarium 2.9 3 100a
800-mL beaker 12.5 3 69.2b
40-mL Petri dish 75 5 28.6c
Trial 2
800-mL beaker 2.5 10 75a
10 5 62.2ab
40 3 53.7bc
40-mL Petri dish 25 15 26.7bc
75 6 6.7c
Hasil dari percobaan pemulihan diringkas dalam Tabel 4. Penyembuhan penyakit secara signifikan lebih tinggi dalam akuarium daripada di gelas
atau cawan petri. Kepadatan Ikan mempunyai pengaruh yang signifikan
pada pemulihan. Pemulihan lebih tinggi (P <0,1) di gelas penuh dengan ikan 2,5 L) 1 dibandingkan dengan 40 ekor L) 1. Ikan terpengaruh sama pemulihan kepadatan dalam cawan Petri, dengan pemulihan lebih rendah di cawan yang diisi dengan 25 dan 75 ikan L) 1. Pemulihan lebih tinggi di cawan Petri (P <0,1), bahkan pada kepadatan ikan tinggi. Dalam perawatan, tingkat amonia lebih tinggi dalam gelas (8,3 mg L) 1 vs 4,3 mg L) 1 dalam gelas dan cawan Petri, tetapi lebih rendah kadar oksigen di
cawan Petri (5,9 mg L) 1 vs 8,3 mg L) 1.
Diskusi
Tetrahymena sp. diisolasi dari lesi kulit guppies alami yang terinfeksi, kultur in vitro dan digunakan dalam percobaan infeksi berikutnya. Parasit ini menyerang pada kulit ikan, pada sirip tidak menyebabkan infeksi sistemik. Untuk pengetahuan kami, tidak ada laporan infeksi oleh Tetrahymena pada ikan. Karakterisasi morfologi saja tidak cukup untuk mengidentifikasi spesies ini. Perbandingan dengan spesies lain dari Tetrahymena sangatlah sulit terutama disebabkan kurangnya fitur dan
rentang tumpang tindih dalam ukuran tubuh dan dalam jumlah baris silia. Namun, tidak adanya silia dapat mengesampingkan klasifikasi sebagai T. corlissi, yang patogen pada ikan (Hoffman, Landolt, Camper, Coats, Stookey & Burek 1975, Lom 1995, Shenberg 2003).
Tetrahymena sp berhasil menginnfeksi guppi, angelfish, platyfish dan neontetra, tapi tidak pada ikan nila. Kulit yang luka tidak mempengaruhi infeksi pada spesies ini. Neontetra, angelfish dan platyfish telah dilaporkan sebelumnya rentan terhadap pyriformis T. (Ponpornpisit et al. 2000) dan infeksi Tetrahymena telah dilaporkan dalam ikan zebra (Astrofsky et al 2002). Akan menarik untuk menguji kerentanan tambahan spesies, termasuk ikan dimakan, dan mungkin mengidentifikasi faktor-faktor yang memberikan proteksi dalam ketahanan ikan. Ikan mati merupakan sumber makanan yang baik untuk parasit, karena kami telah melakukan percobaan pada semua ikan yang mati, termasuk ikan yang tahan ketika hidup. Hal ini sejalan dengan yang dilaporkan saprophytic mengenai sifat parasit ini (Lom 1995). Kami melakukan pengamatan di peternakan ikan hias komersial dan rata-rata ikan terinfeksi karena luka pada kulit dan ini merupakan faktor utama penyebab ikan terinfeksi.
Dalam percobaan, Hoffman et al. (1975) dan Thompson (1958) gagal menginfeksi ikan non-luka dengan corlissi T. Sedangkan Ponpornpisit et al. (2000) berhasil membuat ikan terinfeksi setelah melukai kulit mereka dengan lokal aplikasi asam asetat 10% dan menyarankan bahwa kerusakan jaringan yang meluas ke dalam kulit, atau akibat stress merupakan faktor yang sangat penting dalam keberhasilan infeksi pada ikan. Hatai et al. (2001) melaporkan infeksi sukses di guppi berikut penghapusan beberapa skala dari tubuh mereka. Menariknya, dalam penelitian kami, luka oleh abrasi kulit tidak memiliki pengaruh yang signifikan terhadap infeksi. Mungkin luka yang ditimbulkan pada kulit tidak cukup dalam. Tetrahymena diklasifikasikan dalam subkelas Hymenostomatia dan Oligohymenophorea. Parama, Iglesias, Alvarez, Aja & Sanmartin (2003) menyarankan bahwa scuticociliates (Oligohymenophorea) dan hymenostomatids berkembang dalam lingkungan alam, khususnya di bawah sedimen yang kaya nutrisi, dan
menyebabkan infeksi saat ikan atau mengembangkan lesi
tunduk pada tekanan lingkungan.
Dalam studi ini, pengaruh berbagai factor infeksi dengan protozoa Tetrahymena sp akan di teliti. GBD peningkatan kerentanan terhadap infeksi. Dalam kasus ini, lesi kulit mikroskopik, yang telah melaporkan untuk diidentifikasi sebagai penyakit (Speare 1998), mungkin sebagai tempat masuk untuk parasit. Speare (1998) menyatakan bahwa ikan yang terkena dampak penyakit ini umumnya ikan memiliki keaktifan yang kurang, hal ini disebabkan karena stres atau kerusakan anatomis untuk
pada tubuh, seperti erosi epidermis pada gelembung gas yang melapisi dermal.
Kualitas air yang buruk, termasuk amonia dan bahan organik, dan suhu air rendah meningkatkan infeksi pada ikan. Bahan organik tinggi dan nutrisi tingkat tinggi dapat digunakan oleh parasit, sehingga meningkatnya infeksi di dalam air. Kondisi stres ikan dan akibatnya meningkatkan kerentanan untuk terinfeksi.
Guppi adalah ikan tropis, dengan optimal pemeliharaan suhu 25-27? C. Suhu air yang rendah diuji dalam penelitian ini (16-17 C), sedangkan yang lebih tinggi di uji dengan suhu (30-31 C). Suhu air rendah mungkin mengurangi protozoa Tetrahymena sp, (Hatai et al 2001). Tetapi stres yang terjadi pada ikan mungkin telah menjadi penyebab semakin tingginya infeksi yang terjadi pada ikan.
Ikan lebih rentan terhadap protozoa Tetrahymena sp. Hal ini disebabkan pada saat pengiriman ikan, ikan berada dalam keadaan ruangan yang gelap, hal ini merupakan resiko terjadinya infeksi pada saat pengiriman ikan. Pencahayaan yang cukup dalam simulasi pengiriman meningkatkan kerentanan ikan untuk terinfeksi oleh protozoa Tetrahymena sp. Terinfeksinya ikan terjadi karena kepadatan ikan tinggi, terakumulaasinya dengan oksigen murni, tingginya tekanan, akumulasi beban organik, penurunan pH disebabkan oleh akumulasi CO2 dan peningkatan pH yang sangat pesat saat membukan tempat pembaawa ikan, hal ini disebabkan oleh pelepasan CO2 (Lim, Dhert & Sorgeloos 2003), yang semuanya dapat memiliki efek negatif pada ikan.
Kondisi pada saat pengemasan dan transportasi ikan dapat menyebabkan stress berat, yang kemungkinan akan meningkatkan kerentanan ikan terhadap patogen (Barton & Iwama 1991). Iglesias, Parama, Alvarez, Leiro, Fernandez & Sanmartin (2001) menunjukkan bahwa lesi kecil yang disebabkan oleh paparan saturasi oksigen ikan super-mempengaruhi penyakit yang disebabkan oleh scuticociliates. Seperti lesi
yang mungkin disebabkan oleh kadar oksigen yang tinggi
dalam pengiriman (14,4 mg L) 1), mungkin mempengaruhi
infeksi.
Penyembuhan penyakit juga dipelajari. Stok ikan yang terinfeksi dengan 7-L akuarium pada kepadatan rendah (2,9 ikan L) 1) menyebabkan pemulihan penuh. Meskipun tinggi kepadatan penebaran berdampak negatif pada pemulihan ikan, tidak jelas apakah ini karena kepadatan tinggi per kolam atau seiring dengan penurunan kualitas air. Mengurangi pemulihan ikan dalam cawan Petri mungkin disebabkan oleh
hubungan ke tingkat oksigen yang lebih rendah dan atau terganggu
kemampuan untuk bergerak. Banyak protozo berbulu mata, seperti Tetrahymenasp. Protozoa ini dapat menjadi indikator stress di lingkungan perairan, karena mereka dapat menahan tingkat oksigen terlarut yang rendah dan kandungan bahan organik yang tinggi (Bharati, Khan, Kalavati & Ramam 2001). Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa lingkungan yang buruk dan kondisi fisiologis memiliki efek mendalam pada
infeksi yang disebabkan oleh Tetrahymena sp. Praktek manajemen, seperti menghapus ikan mati, mengoptimalkan kualitas air dan kondisi budidaya, penebaran dengan kepadatan rendah dan umumnya menghindari stres akan mengurangi risiko infeksi dan meningkatkan pemulihan.
Ucapan Terima Kasih.
Kami berterima kasih kepada Prof Ilan Paperna dari Universitas Ibrani Yerusalem untuk saran ahli tentang tetrahymenosis. Kami juga mengucapkan terima kasih kepada Bapak Ran Epstein dari Petambak Colors, Bapak Saul Harel dari Petambak Negev Angels dan Bapak Guy Kaplan dari Petambak Sundag untuk menyediakan jenis ikan hias, dan Bapak Shemaya Toledano dari Petambak Ikan Laut Mati untuk ikan yang
digunakan dalam percobaan kami. Penelitian ini didukung oleh Arava Penelitian Tengah dan Utara, Hilda Blaustein Foundation dan Beasiswa Rotem Endowment Fund.
REFERENSI
APHA (1995) Standard Methods for the Examination of Water
and Wastewater (ed. by A.D. Eaton, L.S. Clesceri & A.E.
Greenberg), pp. 2-08–5-15. American Public Health Association,Washington, DC.
Astrofsky K.M., Schech J.M., Sheppard B.J., Obenschain C.A.,
Chin A.M., Kacergis M.C., Laver E.R., Bartholomew J.L. &
Fox J.G. (2002) High mortality due to Tetrahymena sp.
infection in laboratory maintained zebrafish (Brachydanio
rerio). Comparative Medicine 52, 363–367.
Barton B.A. & Iwama G.K. (1991) Physiological changes in fish
from stress in aquaculture with emphasis on the response and
effects of corticosteroids. Annual Review of Fish Diseases 1, 3–26.
Bharati V.R., Khan R.N., Kalavati C. & Ramam A.V. (2001)
Protozoan colonization on artificial substrates in relation to
water quality in a tropical Indian harbour. Journal of
Environmental Sciences 13, 143–147.
Botes H., Basson L. & Van As L.L. (2001) Two new species of
Mantoscyphidia jankowski, 1980 (Ciliophora: Peritrichia), gill
symbionts of Haliotis Linnaeus, 1758 (Mollusca: Archaeogastropoda)
from the South coast of South Africa. Acta
Protozoologica 40, 131–140.
Ferguson H.W., Hicks B.D., Lynn D.H., Ostland V.E. & Bailey
J. (1987) Cranial ulceration in Atlantic salmon Salmon salar
associated with Tetrahymena sp. Diseases of Aquatic Organisms
2, 191–195.
Foissner W. (1991) Basic light and scanning electron microscope
methods for taxonomic studies of ciliated protozoa. European
Journal of Protistology 27, 313–330.
Hatai K., Chukanhom K., Lawhavinit O., Hanjavanit C.,
Kunitsune M. & Imai S. (2001) Some biological characteristics
of Tetrahymena corlissi isolated from guppy in Thailand.
Fish Pathology 36, 195–199.
Hoffman G.L., Landolt M., Camper J.E., Coats D.W., Stookey
J.L. & Burek J.D. (1975) A disease of freshwater fishes caused
by Tetrahymena corlissi Thompson, 1955, and a key for
identification of holotrich ciliates of freshwater fishes. The
Journal of Parasitology 61, 217–223.
Iglesias R., Parama A., Alvarez J.L., Leiro J., Fernandez J. &
Sanmartin M.L. (2001) Philasterides dicentrarchi (Ciliophora,
Scuticociliatida) as the causative agent of scuticociliatosis in
farmed turbot (Scophthalmus maximus) in Galicia (NW
Spain). Diseases of Aquatic Organisms 46, 47–55.
Imai S., Tsurimaki S., Goto E., Wakita K. & Hatai K. (2000)
Tetrahymena infections in guppies Poecilia reticulata. Fish
Pathology 35, 67–72.
Lim L.C., Dhert P. & Sorgeloos P. (2003) Recent developments
and improvements in ornamental fish packaging systems for
air transport. Aquaculture Research 34, 923–935.
Lom J. (1995) Trichodinidae and other ciliates (Phylum
ciliophora) In: Fish Diseases and Disorders: Protozoan and
metazoan infections (ed. by P.T.K Woo), pp. 229–262. CABI
Publishing, New York.
Loo J.J., Ling K.H. & Lim L.C. (1998) Development of an
improved treatment protocol for quality enhancement of
guppy prior to export. Singapore Journal of Primary Industries
26, 15–20.
Parama A., Iglesias R., Alvarez J.L., Aja C. & Sanmartin M.L.
(2003) Philasterides dicentrarchi (Ciliophora, Scuticociliatida):
experimental infection and possible routes of entry in
farmed turbot (Scophthalmus maximus). Aquaculture 217,
73–80.
Ponpornpisit A., Endo M. & Murata H. (2000) Experimental
infections of a ciliate Tetrahymena pyriformis on ornamental
fishes. Fisheries Science 66, 1026–1031.
Ponpornpisit A., Endo M. & Murata H. (2001) Prophylactic
effects of chemicals and immunostimulants in experimental
Tetrahymena infections of guppy. Fish Pathology 36, 1–6.
Shenberg S. (2003) Histopathology of the Ciliate Tetrahymena
corlissi Infection in Guppy Poecilia reticulata. MSc thesis, The
Hebrew University of Jerusalem, Rehovot.
Speare D.J. (1998) Disorders associated with exposure to excess
dissolved gases. In: Fish Diseases and Disorders: Non-Infectious
Disorders (ed. by P.T.K. Woo & J.F. Leatherland), pp. 207–
224. CABI Publishing, New York.
Thompson J.C. Jr (1958) Experimental infections of various
animals with strains of the genus Tetrahymena. Journal of
Protozoology 5, 203–205.
Received: 21 March 2005
Revision received: 21 July 2005
Accepted: 21 July 2005
547
_ 2005
Blackwell Publishing Ltd
Journal of Fish Diseases 2005, 28, 539–547 M Pimenta Leibowitz et al. Tetrahymena sp. infection in guppies
LINGKUNGAN DAN KONDISI FISIOLOGIS YANG MEMPENGARUHI TETRAHYMENA SP. INFEKSI PADA GUPPIES, POECILIA RETICULATE PETERS
(TUGAS PARASIT DAN PENYAKIT ORGANISME AIR)
OLEH :
Alwan Tholifin 0814111024
Tri Agustina 0814111063
Tutut Yuniarsih 0714111..…
PROGRAM STUDY BUDIDAYA PERAIRAN
FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS LAMPUNG
2010
A. Judul
Pengaruh Lama Kejutan Panas Terhadap Ginogenesis Pada Ikan Lele (Clarias batrachus)
B. Latar Belakang Masalah
Beberapa tahun terakhir ini, kondisi populasi ikan lele lokal (Clarias batrachus) di alam dirasakan cukup rendah, bahkan dapat dikategorikan jarang (rare) terutama di pulau Jawa. Kondisi tersebut sebagai akibat adanya pertumbuhan penduduk, perusakan habitat (hilangnya fungsi hutan dan fragmentasi), hilangnya rawa dan sungai yang makin kecil, dan terakhir yang tidak kalah pentingnya adalah aplikasi pestisida di lahan pertanian (Hadie, 2001).
Sedangkan induk murni ikan lele sudah cukup sulit didapatkan. Padahal keberadaannya sangat penting dalam dunia usaha. Karena dari induk yang murni dapat melahirkan keturunan yang unggul, yaitu tumbuh cepat, rentan terhadap serangan penyakit dan perubahan lingkungan. Bila dipelihara dapat diperoleh hasil yang maksimal dengan tingkat kehidupannya (SR) yang tinggi. Kemurnian induk ikan lele harus dikembalikan. Salah satu cara yang bisa dilakukan untuk mengembalikan kemurniannya adalah dengan melakukan persilangan-persilangan dalam (in breeding). Namun cara ini membutuhkan lebih dari enam generasi. Satu generasi membutuhkan waktu 2 tahun, yaitu waktu yang dibutuhkan untuk mendapatkan induk. Jadi cara ini membutuhkan waktu selama 12 tahun. Untuk memperpendek masa pemurnian dapat dilakukan dengan cara ginogenesis. Cara ini bisa merubah dari 6 generasi menjadi 2 generasi, strain murni sudah dapat diperoleh pada generasi kedua.
Ginogenesis yang dimaksud adalah bentuk khusus dari parthenogenesis, dimana nukleus sperma yang masuk ke dalam telur dalam keadaan tidak aktif, sehingga perkembangan telur hanya dikendalikan oleh sifat genetik dari individu betina, atau dengan kata lain terbentuknya zigot tanpa peran material genetik gamet jantan. Ginogenesis adalah proses perkembangan embrio yang berasal dari kuning telur tanpa kontribusi material genetik jantan.
Namun, tingkat keberhasilan ginogenesis sendiri dipengaruhi dari ketepatan besar suhu, lama kejutan suhu, serta ketepatan waktu saat radiasi. Sehingga, dapat dikatakan ketepatan lama kejutan suhu dapat mempengaruhi kelangsungan hidup dari telur yang diperlakukan dengan ginogenesis.
C. Perumusan Masalah
Dari proses ginogenesis larva yang didapatkan sangat rendah atau survivel rate (SR) menurun. Dikatakan pada latar belakang bahwa salah satu penyebab dari ketidakberhasilan dari ginogenesis adalah ketidaktepatan lama kejutan panas. Kejutan suhu dilakukan agar badan polar (polar body) tertahan di telur, sehingga kromosom tetap 2n (diploid) walau tanpa material genetik dari sperma. Maka, kami melakukan penelitian ini untuk mengetahui lama kejutan suhu yang tepat pada proses ginogenesis. Dengan demikian, kita dapat mempertahankan keanekaragaman genetiknya.
D. Tujuan
Tujuan dari program ini:
Untuk memperoleh informasi lama kejutan panas terhadap ginogenesis dengan harapan mendapatkan benih murni ikan lele, serta dapat mempertahankan keanekaragaman genetiknya.
E. Luaran Yang Diharapkan
Induk murni ikan lele (Clarias batrachus) yang bermutu unggul dengan pertumbuhan cepat dan ketahanan terhadap penyakit.
F. Kegunaan
Kegunaan dari adanya penelitian pengaruh lama kejutan panas terhadap ginogenesis adalah:
1. Memproduksi benih lele yang unggul.
2. Memenuhi kebutuhan benih murni terbaik dari ikan lele (Clarias batrachus), serta kebutuhan masyarakat untuk konsumsi.
G. Tinjauan Pustaka
G.1 Ikan Lele (Clarias batrachus)
Ikan lele (C. batrachus) adalah sejenis ikan yang hidup di air tawar. Lele mudah dikenali karena tubuhnya yang licin, agak pipih memanjang, serta memiliki "kumis" yang panjang, yang mencuat dari sekitar bagian mulutnya. Morfologi ikan ini adalah tengah badanya mempunyai potongan membulat, dengan kepala pipih kebawah (depressed), sedangkan bagian belakang tubuhnya berbentuk pipih kesamping (compressed). Sedangkan organ – organ lainya dari ikan lele itu sendiri terdiri dari jantung, empedu, labirin, gonad, hati, lambung dan anus (Zaki, 2009).
Peranan yang menguntungkan dari ikan yang satu ini adalh sebagai bahan makanan karena rasanya yang enak dan gurih, juga sebagai pemberantas hama padi yang berupa serangga air, juga banyak mengandung Leusin dan Lisin untuk pertumbuhan anak –anak. Adapun peranan yang merugikan dari ikan lele ini adalah pada ikan lele yang masih muda patilnya mengandung racun, sedangkan pada ikan lele yang agak tua racunya agak berkurang. Ikan lele juga dapat memakan ikan-ikan lainya atau sebagai predator (Zaki, 2009).
Karakterisasi keanekaragaman dan pemanfaatan ikan lokal yang berpotensi untuk budidaya perlu ditingkatkan. Dua cara pendekatan yang perlu digunakan untuk mengetahui atau mempelajari karakterisasi spesies, populasi dan strain kaitannya dengan penurunan keragaannya (performance) serta untuk mengevaluasi pengaruh ikan introduksi terhadap komunitas ikan budidaya asli setempat adalah:1) analisis morfometri, yaitu mengidentifikasi spesies atau jenis menggunakan karakter terukur seperti panjang standar dan jumlah sirip keras, dan 2) analisis biokimia: yaitu pendugaan variasi genetik melalui analisis protein, enzim, dli., kedua cara ini sebetulnya saling berkaitan (Sudarto, 2004).
G.2 Ginogenesis
Partenogenesis adalah satu-satunya proses reproduksi yang sama sekali tak memerlukan peran pejantan. Keturunan partenogenesis akan betina semua jika dua kromosom yang sama membentuk jenis kelamin betina (sistem kromosomnya XX adalah betina dan XY jantan), salah satunya adalah ginogenesis. Ginogenesis adalah proses terbentuknya zigot dari gamet betina tanpa kontribusi dari gamet jantan. Dalam ginogenesis gamet jantan hanya berfungsi untuk merangsang perkembangan telur dan sifat-sifat genetisnya tidak diturnkan. Ginogenesis dapat terjadi secara alami dan buatan.
Ginogenesis buatan dapat dilakukan dengan mutagenesis sperma dengan sinar ultraviolet (UV) dan kejutan panas. Radiasi yang terjadi merupakan proses penyinaran dengan menggunakan bahan mutagen untuk menghasilkan mutan. Sinar ultraviolet (UV) merupakan radiasi yang juga merupakan sinar tidak tampak yang mempunyai panjang gelombang 200-380 nm (Marsendre, 2007).
Strategi yang akan ditempuh adalah melalui konsep genetika dengan memperhatikan effective population size (Ne). Jumlah Ne terbatas akan terjadi erosi genetic pada populasi kecil karena kehilangan alel secara acak selama segregasi dalam meiosis. Oleh karena itu disarankan untuk menggunakan teknik reproduksi tingkat tinggi untuk memproduksi lebih dari satu sel telur per meiosis (Santiago dan Caballero, 2000). Sedangkan pada tekanan inbreeding, Kebanyakan pengaruh dari tekanan inbreeding pada survival rate larva yang rendah sebagian akibat menghasilkan dampak negatif berjenjang dan karenanya genetic, demografik, pengaruh lingkungan tidak dapat dipisahkan dari kepunahan species local. (Nieminen et al, 2001).
Ginogenesis adalah proses perkembangan embrio yang berasal dari kuning telur tanpa kontribusi material genetik jantan. Ginogenesis secara alami terjadi pada ikan mas koki (Carassius auratus) dan jenis vivipar kecil famili poecillidae dan poeciliopsis). Dalam ginognesis alami sperma dari spesies lain hanya berfungsi sebagai trigger perkembangan telur. ginogenesis dapat terjadi secara alami maupun buatan. Ginogenesis terjadi secara alami pada ikan mas koki dan poecilia. Dalam ginogenesis alami sperma dari spesies lain hanya berfungsi sebagai trigger/pemicu perkembangan telur (Irmawan, 2009).
Ginogenesis secara buatan dilakukan dengan mutagenesis sperma. Perlakuan yang diberikan harus mencapai dua fungsi: (1). Menyebabkan material genetik gamet jantan menjadi tidak aktif, pada ikan dapat dilakukan pada tahap pembuahan dan awal perkembangan embrio; (2). Mengupayakan terjadinya diploidisasi untuk menjadi zygot. Tujuan dari ginogenesis buatan adalah: (1) Mempercepat silang dalam ikan, hasilnya berupa strain murni dengan homozigositas yang tinggi (2) Mempertahankan keturunan dari induk (Irmawan, 2009).
Sebelum melakukan ginogenesis buatan dengankejutan suhu, dilakukan penyuntikan induk ikan lele (Clarias sp.) dengan Ovaprime, dengan tujuan mempercepat pematangan gonad. Menurut King dan Young (2001) dalam Maftucha (2005), ovaprime merupakan produk yang mengandung 20µg D-Arg6, Pro9-Net sGnRH dan 10 mg domperidone per ml propylene glycol.
H. Metode Pelaksanaan
Metode yang dipergunakan adalah:
1. Waktu dan Tempat
Penelitian ini akan dilaksanakan pada bulan Mei hingga Agustus 2011 di Laboratorium Basah, Program Studi Budidaya Perairan Fakultas Pertanian Universitas Lampung.
2. Alat dan bahan adalah akuarium dengan ukuran 50 cm x 80 cm x 80 cm, pemanas air, stop watch, termometer, lempengan kaca, bulu ayam, mangkuk atau baskom, kertas tissue, alat bedah, rak plastik, box UV, dan aerator. Sedangkan bahan-bahan yang digunakan meliputi : induk ikan lele jantan dan betina, larutan fisiologis, dan ovaprime.
3. Prosedur pelaksanaan
I. Jadwal Kegiatan
Kegiatan ini dilakukan selama 2 bulan yaitu pada bulan Juni-Juli dengan jadwal sebagai berikut:
No. Pelaksanaan
Kegiatan Bulan 1 Bulan 2 Bulan 3 Bulan 4
1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4 1 2 3 4
1. Perencanaan
2. Persiapan
3 Penelitian
4. Perkembangan
5. Pengamatan
5. Evaluasi
6. Pembuatan laporan
J. Rancangan Biaya
Tabel 1. Biaya Investasi
No. Uraian Jumlah Fisik Harga Satuan Nilai
1. Akuarium 12 buah Rp. 75.000,00 Rp. 900.000,00
2. Alat suntik 6 buah Rp. 25.000,00 Rp. 150.000,00
3. Thermometer 5 buah Rp. 50.000,00 Rp. 250.000,00
4. Lempeng kaca 12 buah Rp. 15.000,00 Rp. 180.000,00
5. UV 2 buah Rp. 500.000,00 Rp.1.000.000,00
6. Box 1 buah Rp. 500.000,00 Rp. 500.000,00
7. Mangkuk/baskom 3 buah Rp. 15.000,00 Rp. 45.000,00
8. Stopwatch 3 buah Rp. 50.000,00 Rp. 150.000,00
9. Alat Bedah 3 buah Rp. 80.000,00 Rp. 240.000,00
10. Aerator 1 buah Rp. 300.000,00 Rp. 300.000,00
11. Pemanas air (heater) 3 buah Rp. 250.000,00 Rp. 750.000,00
12. Rak plastic 1 buah Rp. 150.000,00 Rp. 150.000,00
13. Genset 1 buah Rp.1.500.000,00 Rp.1.500.000,00
Total Biaya Investasi Rp.6.115.000,00
Tabel 2. Biaya Variabel
No. Uraian Jumlah Fisik Harga Satuan Nilai
1. Induk Ikan Lele 10 pasang Rp. 75.000,00 Rp. 750.000,00
2. Ovaprime 100 ml Rp. 150.000,00 Rp.1.500.000,00
3. Larutan fisiologi 2 buah Rp. 15.000,00 Rp. 30.000,00
4. Kertas tissue 2 buah Rp. 15.000,00 Rp. 30.000,00
5. Methylen blue 500 ml Rp. 25.000,00 Rp. 125.000,00
6. Pakan daphnia 1 paket Rp. 300.000,00 Rp. 300.000,00
7. Pakan P0 20 kg Rp. 70.000,00 Rp. 140.000,00
8. Serokan 12 buah Rp. 10.000,00 Rp. 120.000,00
9. Bensin 50 liter Rp. 4.500,00 Rp. 225.000,00
Total biaya variabel Rp.3.220.000,00
Total biaya investasi Rp.6.115.000,00
Jumlah Rp.9.335.000,00
K. Daftar Pustaka
Hadie, Wartono. 2001. Strategi Etik dan Pendekatan Analisis Genetika Molekuler Kasus pada Ikan Lele (Clarias batrachus) Di Pulau Jawa. Skripsi Pasca Sarjana. Institut Pertanian Bogor.
Jatilaksono, Marsandre. 2007. Ginogenesis Ikan Lele. Dikutip dari http://jlcome.blogspot.com. Tanggal 11 Maret 2010. Pukul 13.45 WIB.
Maftucha, Lulu. 2005. Pemijahan Secara Buatan Pada Ikan Gurame Osphronemus gouramy Lac. Dengan Penyuntikan Ovaprim. Skripsi. Departemen Budidaya Perairan Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Institut Pertanian Bogor.
Nieminen, M., M.C. Singer, W. Fortelius, K. Schops, and I. Hanks. 2001. Experimental confirmation that inbreeding depression increases extinction risk in butterfly populations. American Naturalist 157)237-244. nieminen@helsinki.fi. Tanggal 23 Maret 2010. Pukul 13.05 WIB.
Pudjirahaju, Asri dkk. 2006. Pengaruh Perbedaan Suhu Kejutan Panas Terhadap Keberhasilan Gynogenesis Pada Ikam Mas (Cyprinus carpio L.). Journal of Tropical Fisheries. Universitas Palangka Raya.
Santiago, E. and A. Caballero. 2000. Application of reproduction technology to the conservation of genetic resources. Conservation Biology 14(5):1831-1836. Armando@uvigo.es. Tanggal 23 Maret 2010. Pukul 14.05 WIB.
Sudarto. 2004. Karakteristik Genetik Ikan Lele. Warta PenelitianPerikanan Indonesia. Balai Riset Perikanan Budidaya Air Tawar. Bogor.
Syafitrianto, Irmawan. 2009. Ginogenesis Dalam Pemuliabiakan Ikan. Dikutip dari http://wacanasainsperikanan.blogspot.com . Tanggal 11 Maret 2010. Pukul 13.30 WIB.
Zaki. 2009. Ikan Lele (Clarias batrachus). Dikutip dari http://biologi-c.blogspot.com. Tanggal 11 Maret 2010. Pukul 13.35 WIB.
LAMPIRAN
Biodata Anggota Kelompok
Ketua Kelompok
Nama : Alwan Tholifin
NPM : 0814111024
Tempat, tanggal lahir : Tanjung Qencono, 18 April 1990
Alamat lengkap : DesaTanjung Qencono Kecamatan Way Bungur, Kabupaten Lampung Timur
Riwayat Pendidikan
2008-sekarang : Budidaya Perairan FP Universitas Lampung
2005-2008 : SMA Negeri 1 Purbolinggo
2002-2005 : SMP Negeri 1 Way Bungur
1996-2002 : SD Negeri 1 Tanjung Qencono
Telp/Hp :
Tanda tangan
Alwan Tholifin
Anggota 1
Nama : Musani
NPM : 0714111047
Tempat, tanggal lahir : Jakarta, 29 Maret 2010
Alamt lengkap : Jln. Raden Pemuka, Gunung Sulah, Kecamatan Sukarame, Bandar Lampung.
Riwayat Pendidikan
2007-sekarang : Budidaya Perairan FP Universitas Lampung
2004-2007 : MAN 1 Bandar Lampung
2001-2004 : SMP Al-Kautsar
1995-2001 : SD Negeri 2 Way Halim Permai
Tanda tangan
Musanni
Anggota 3
Nama : Nindri Yarti
NPM : 0814111049
Tempat, tanggal lahir : Teluk Betung, 6 November 1989
Alamat lengkap : Perum. Tanjung Baru Blok A7 No.9 Negara Ratu Natar, Lampung Selatan
Riwayat Pendidikan
2008-sekarang : Budidaya Perairan FP Universitas Lampung
2005-2008 : SMA Negeri 1 Natar
2002-2005 : SMP Negeri 1 Natar
1996-2002 :SD Negeri 1 Kupang Kota dan SD Negeri 1 Negara Ratu
Tanda tangan
Nindri Yarti
PRINSIP BUDIDAYA IKAN AIR TAWAR
Sektor perikanan merupakan salah satu pilar dalam pemenuhan kesejahteraan masyarakat melalui kecukupan protein hewani. Untuk menunjang keberhasilan bidang perikanan khususnya peningkatan produksi perikanan air tawar, diperlukan benih unggul dan teknologi tepat guna yang mudah diaplikasi oleh masyarakat pengguna melalui informasi teknologi budidaya perikanan
PRINSIP BUDIDAYA IKAN AIR TAWAR
Yang perlu diperhatikan dalam melakukan budidaya ikan air tawar, yaitu:
Pemilihan Lokasi Kolam
- Kebutuhan air tersedia sepanjang tahun; kualitas air bersih/tidak tercemar; pH berkisar 6,5-8; suhu air 24-28oC
- Mudah terjangkau dan bebas banjir
- Tanah dasar kolam jenis liat/lempung, tidak berporos dan cukup mengandung humus
- Kemiringan tanah berkisar 3-5%
- Ketinggian mencapai 50-500 m dpl
- Kedalaman kolam 50-100 cm / sesuai kebutuhan
Pemilihan Benih/Bibit
- Bibit unggul : sehat, resisten terhadap penyakit, gerakannya lincah, respon terhadap pakan
Sistem dan Manajemen Budidaya
- Persiapan lahan (kolam)
o Pengeringan, pembajakan dan perataan tanah dasar kolam
o Perbaikan pematang dan pembuatan parit
o Pemberian kapur 20-200 g/m2
o Pemupukan 500-700 g/m2
o Pemasangan saringan air
o Pengisian air kolam secara bertahap, biarkan ±7 hari untuk memberikan kesempatan tumbuhnya pakan alami.
- Pelaksanaan budidaya
o Penebaran benih pada saat udara tidak panas dan diaklimatisasikan (perlakuan penyesuaian suhu) terlebih dahulu. Padat tebar disesuaikan dengan memperhatikan efektifitas dan efisiensi.
o Pemberian pakan berkualitas baik dengan dosis 2-5% bobot tubuh atau secara adlibitum (sampai kenyang)
o Perawatan selama pemeliharaan
- Mengontrol kualitas air (sumber air, sisa pakan) dan pematang
- Pemberantasan hama dan penyakit
Pemanenan
o Pemanenan dilakukan setelah ikan mencapai ukuran yang diinginkan baik secara total maupun panen sebagian.
HEMATOLOGI DARAH DENGAN METODE ULAS DARAH
(Laporan Praktikum Penyakit dan Parasit Organisme Air)
Oleh
KELOMPOK 10
1. ALWAN THOLIFIN (0814111024)
2. M. DENI FERDIAN (0814111041)
3. NASYIR HUSEIN (0854111004)
4. NENI PUTRIANI (0714111066)
5. SEPTI YOLANDA (0814111016)
6. YAYU SASKIA (0814111065)
PROGRAM STUDI BUDIDAYA PERAIRAN
FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS LAMPUNG
2010
I. PENDAHULUAN
A. Latar Belakang
Darah terdiri atas dua kelompok besar, yaitu sel dan plasma. Sel terdiri atas sel-sel diskret yang memiliki bentuk khusus dan fungsi yang berbeda, sedangkan komponen dari plasma, selain fibrinogen juga terdapat ion-ion inorganik. Darah mengalir membawa oksigen dari insang ke jaringan, karbondioksida ke kulit dan insang, produk pencernaan dari usus ke hati, produk-produk dari hati ke jaringan, dan ion seperti Na+ dan Cl- yang berperan dalam osmoregulasi. Darah berfungsi
membawa hormon dan vitamin, terutama dalam plasma darah. Selain itu darah juga berfungsi mengedarkan sari-sari makanan ke seluruh tubuh. Darah juga memacu
kerja jantung sehingga jantung dapat menghasilkan darah yang baru. Darah membawa dari substansi dari tempatnya dibentuk ke semua bagian tubuh dan menjaga tubuh dapat melakukan fungsinya dengan baik (Fujaya, 2002).
Sedangkan pada plasma darah memiliki komponen-komponen plasma yaitu adanya air, protein, Bahan–bahan terlarut, elektrolit, Nutrien dan Gas–gas darah. Dalam sel darah ada yang dinamakan dengan eritrosit yaitu sel darah merah yang memiliki inti dengan ukuran yang bervariasi diantara spesies lainnya. Fungsi dari sel darah merah adalah untuk mengangkut haemoglobin yang berperan membawa oksigen dari insang keparu–paru kemudian kejringan selain itu juga eritrosit berfungsi untuk mengkatalis reaksi antara karbondioksida dan air (Fujaya, 2002).
B. Tujuan Praktikum
Adapun tujuan dari praktikum adalah sebagai berikut :
1. Untuk mengetahui macam-macam leukosit.
2. Untuk mengetahui jenis leukosit apa yang banyak terdapat dalam darah ikan.
II. TINJAUAN PUSTAKA
A. Morfologi dan Taksonomi Ikan Lele (Clarias batrachus)
Lele merupakan jenis ikan konsumsi air tawar dengan tubuh memanjang dan kulit licin.Dalam bahasa Inggris disebut pula catfish, siluroid, mudfish dan walking catfish. Klasifikasi ikan lele menurut Hasanuddin Saanin dalam Djatmika et al (1986) adalah:
Kingdom : Animalia
Sub-kingdom : Metazoa
Phyllum : Chordata
Sub-phyllum : Vertebrata
Klas : Pisces
Sub-klas : Teleostei
Ordo : Ostariophysi
Sub-ordo : Siluroidea
Familia : Clariidae
Genus : Clarias
Adapun beberapa penyakit yang terdapat pada ikan lele antara lain :
a. Penyakit karena bakteri Aeromonas hydrophilla dan Pseudomonas hydrophylla.
b. Penyakit tuberculosis yang disebabkan bakteri Mycobacterium fortoitum.
c. Penyakit karena jamur/candawan Saprolegnia.
d. Penyakit bintik putih dan gatal (Trichodiniasis).
e. Penyakit cacing Trematoda.
Faktor yang menyebabkan ikan lele terserang penyakit parasit, yaitu :
a. Bila suhu terlalu tinggi, kolam diberi peneduh sementara dan air diganti dengan yang suhunya lebih dingin.
b. Bila pH terlalu rendah, diberi larutan kapur 10 gram/100 l air.
c. Bila kandungan gas-gas beracun (H2S, CO2), maka air harus segera diganti.
d. Bila makanan kurang, harus ditambah dosis makanannya.
(http://www.pustakatani.org/InfoTeknologi)
B. Habitat Ikan Lele (Clarias batrachus)
Ikan lele tidak pernah ditemukan di air payau atau air asin. Habitatnya di sungaidengan arus air yang perlahan, rawa, telaga, waduk, sawah yang tergenang air. Ikan lele bersifat noctural, yaitu aktif bergerak mencari makanan pada malam hari. Pada siang hari, ikan lele berdiam diri dan berlindung di tempat-tempat gelap. Di alam ikan lele memijah pada musim penghujan.
Ikan lele dapat hidup pada suhu 200 C, dengan suhu optimal antara 25-280C. Sedangkan untuk pertumbuhan larva diperlukan kisaran suhu antara 26-300C dan untuk pemijahan 24-28 0C. Ikan lele dapat hidup dalam perairan agak tenang dan kedalamannya cukup, sekalipun kondisi airnya jelek, keruh, kotor dan miskin zat O2. Perairan tidak boleh tercemar oleh bahan kimia, limbah industri, merkuri, atau mengandung kadar minyak atau bahan lainnya yang dapat mematikan ikan. Kondisi tubuh ikan lele dapat menurun salah satunya dapat disebabkan oleh penyakit parasit. Penyakit parasit adalah penyakit yang disebabkan oleh organisme tingkat rendah seperti virus, bakteri, jamur, dan protozoa yang berukuran kecil.
C. Leukosit
Sel darah putih atau leukosit adalah sel yang membentuk komponen darah. Sel darah putih ini berfungsi untuk membantu tubuh melawan berbagai penyakit infeksi sebagai bagian dari sistem kekebalan tubuh. Sel darah putih tidak berwarna, memiliki inti, dapat bergerak secara amoebeid, dan dapat menembus dinding kapiler / diapedesis. Dalam keadaan normalnya terkandung 4x109 hingga 11x109 sel darah putih di dalam seliter darah manusia dewasa yang sehat - sekitar 7000-25000 sel per tetes. Dalam kasus leukemia, jumlahnya dapat meningkat hingga 50000 sel per tetes.
Di dalam tubuh, leukosit tidak berasosiasi secara ketat dengan organ atau jaringan tertentu, mereka bekerja secara independen seperti organisme sel tunggal. Leukosit mampu bergerak secara bebas dan berinteraksi dan menangkap serpihan seluler, partikel asing, atau mikroorganisme penyusup. Selain itu, leukosit tidak bisa membelah diri atau bereproduksi dengan cara mereka sendiri, melainkan mereka adalah produk dari sel punca hematopoietic pluripotent yang ada pada sumsum tulang. Leukosit turunan meliputi: sel NK, sel biang, eosinofil, basofil, dan fagosit termasuk makrofaga, neutrofil, dan sel dendritik.
Adakalanya benda asing ataupun mikroba yang tidak dikehendaki memasuki tubuh kita. Jika hal tersebut terjadi tubuh akan menganggap benda yang masuk itu sebagai benda asing atau antigen.
Antigen yang masuk ke dalam tubuh akan dianggap sebagai benda asing. Akibatnya tubuh melalui sel-sel darah putih (leukosit) memproduksi antibodi untuk menghancurkan antigen tersebut. Glikoprotein yang terdapat di dalam hati kita dapat merupakan antigen bagi orang lain jika glikoprotein tersebut disuntikkan kepada orang lain. Hal ini membuktikan bahwa suatu bahan dapat dianggap sebagai antigen untuk orang lain tetapi belum tentu sebagai antigen untuk kita. Hal tersebut juga berlaku untuk keadaan sebaliknya.
Berdasarkan ada atau tidaknya granula di dalam plasma, leukosit dibagi menjadi :
1. Leukosit bergranula (granulosit), antara lain Neutrofil, Eosinofil, dan Basofil.
2. Leukosit tidak bergranula (agranulosit), antara lain Limfosit dan Monosit.
III. METODOLOGI
A. Waktu dan Tempat Praktikum
Praktikum Ektoparasit dengan Metode Pewarnaan Lugol Iodine ini dilaksanakan pada hari Rabu tanggal 20 Mei 2010 pada pukul 15.00 WIB sampai dengan selesai yang bertempat di Laboratorium Bioteknologi Budidaya Perairan, Fakultas Pertanian, Universitas Lampung.
B. Alat dan Bahan
Peralatan yang digunakan pada praktikum ini antara lain mikroskop binokuler, jarum suntik Singe, gelas benda, gelas penutup, alat bedah, nampan, tabung darah, stopwatch, dan tissue. Sedangkan bahan-bahan yang dibutuhkan antara lain ikan lele (Clarias batrachus), larutan EDTA, alcohol 70%, aquades, metal alcohol (methanol) 70%, dan larutan giemsa 10%.
C. Cara Kerja
Pengamatan dilakukan dengan cara :
IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
A. Hasil Pengamatan
Setelah dilakukan pengamatan, didapat hasil sebagai berikut :
1. Limfosit = 38 buah
2. Neutrofil = 10 buah
3. Basofilia = 5 buah
4. Monosil = tidak ditemukan
5. Trombosit = 57 buah
B. Pembahasan
Sel darah putih atau leukosit adalah sel yang membentuk komponen darah. Sel darah putih ini berfungsi untuk membantu tubuh melawan berbagai penyakit infeksi sebagai bagian dari sistem kekebalan tubuh. Sel darah putih tidak berwarna, memiliki inti, dapat bergerak secara amoebeid, dan dapat menembus dinding kapiler / diapedesis. Dalam keadaan normalnya terkandung 4x109 hingga 11x109 sel darah putih di dalam seliter darah manusia dewasa yang sehat - sekitar 7000-25000 sel per tetes. Dalam kasus leukemia, jumlahnya dapat meningkat hingga 50000 sel per tetes.
Di dalam tubuh, leukosit tidak berasosiasi secara ketat dengan organ atau jaringan tertentu, mereka bekerja secara independen seperti organisme sel tunggal. Leukosit mampu bergerak secara bebas dan berinteraksi dan menangkap serpihan seluler, partikel asing, atau mikroorganisme penyusup. Selain itu, leukosit tidak bisa membelah diri atau bereproduksi dengan cara mereka sendiri, melainkan mereka adalah produk dari sel punca hematopoietic pluripotent yang ada pada sumsum tulang. Leukosit turunan meliputi: sel NK, sel biang, eosinofil, basofil, dan fagosit termasuk makrofaga, neutrofil, dan sel dendritik.
Berdasarkan ada atau tidaknya granula di dalam plasma, leukosit dibagi menjadi :
1. Leukosit bergranula (granulosit), antara lain :
a. Neutrofil
Gambar 1. Neutrofil
Neutrofil (juga disebut sebagai heterofil) merupakan granulosit yang biasa terdapat pada ikan dan telah diientifikasi pada kebanyakan spesies ikan. Fungsi utama neutrofil dalam respon imun pada mamalia adalah fagositosis dan penghancuran benda asing. Fagositosis oleh neutrofil telah ditunjukkan pada banyak spesies ikan. Neutrofil merupakan sel pertama yan merespon dalam 24 jam pertama pada infeksi akut.
Sel neutrofil biasanya bulat sampai oval dengan nukleus eksentrik. Pada beberapa spesies nukleus dapat berlobus, tapi temuan ini bukan merupakan temuan yang konsisten. Lebih spesifik, nukleus berbentuk bulat sampai oval dengan sebuah lekukan. Kromatin yang kasar berkumpul dan tercat ungu gelap. Sitoplasma brwarna abu-abu pucat dan mempunyai granula yang tercat bervariasi (abu-abu sampai biru sampai merah), bergantung pada maturitas sel. Subtipe dari neutrofil telah ditemukan pada beberapa jenis ikan, dan hal ini akan mempersulit identifikasi.
b. Eosinofil dan Basofil
Gambar 2. Basofil
Eosinofil secara normal dapat ditemukan pada bermacam jaringan pada ikan dan dapat terakumulasi pada beberapa proses keradangan, terutama pada respon terhadap infeksi parasit. Namun eosinofil dan basofil yang bersirkulasi telah ditemukan pada beberapa spesies. Karakteristik khusus dari eosinofil yaitu mempunyai granula spheris atau bentuk batang. Basofil sendiri lebih jarang didapatkan daripada eosinofil.
c. Trombosit
Gambar 3. Trombosit
Trombosit bukan merupakan leukosit yang sebenarnya. Walaupun begitu, harus dapat dibedakan dari leukosit untuk mendapatkan penghitungan WBC yang akurat. Sebagai tambahan, beberapa proses penyakit pada ikan telah dihubungkan dengan terdapatnya jumlah trombosit abnormal. Trombosit sendiri termasuk pleiomorfik dan dapat berbentuk bulat, bujur, fusiform, atau berbentuk bel. Metode preparasi apus darah sangat berpengaruh terhadap morfologi. Contohnya, trombosit yang dilihat pada preparat yang baru saja dibuat akan terlihat berbeda pada dibandingkan pada preparat yang lebih lama. Sebagai analog platelet, trombosit akan mengumpul pada preparat yang tidak dipreparasi dengan baik atau kadang pada ikan yang stress. Nukleus berwarna ungu gelap, kromatin yang terkumpul padat. Sitoplasma colorless sampai biru cerah.
2. Leukosit tidak bergranula (agranulosit), antara lain :
a. Limfosit
Gambar 4. Limfosit
Limfosit berperan dalam respon imun spesifik yang dimediasi sel B dan sel T pada ikan, termasuk produksi antibodi dan imunitas cell-mediated spesifik. Limfosit pada ikan mempunyai karakteristik seperti pada vertebrata, yaitu pada tingkat responsif terhadap sitokin dan mitogen. Limfosit biasanya merupakan leukosit yang banyak terdapat di pembuluh darah perifer dan merupakan leukosit yang paling sensitif terhadap stres.
Limfosit pada ikan mirip dengan limfosit pada unggas dan mamalia. Sel berbentuk bulat dengan ukuran nukleus yang hampir menutupi sitoplasma. Sitoplasma yang sedikit , homogen, dengan warna biru mengelilingi nkuleus berwarna ungu gelap dengan kromatin yang tersusun kasar. Granula sitoplasma berwarna merah kadang dapat terlihat. Limfosit bervariasi ukurannya mulai dari sepertiga eritrosit sampai berukuran sama. Limfosit yang lebih besar cenderung mempunyai proporsi sitoplasma yang lebih besar.
b. Monosit
Gambar 5. Monosit
Monosit kadang muncul pada darah perifer ikan. Sel ini merupakan fagosit aktif dan dipengaruhi oleh sitokin. Kemungkinan berbperan juga dalam beberapa respon imun spesifik. Fagosit mononuklear sering terdapat pada keradangan kronik (misal: mycobacteriosis, bacterial kidney disease), tapi hubungannya dengan perubahan pada leukogram belum jelas diketahui. Monosit jarang terlihat pada preparat apus darah dibandingkan limfosit dan granulosit. Sel dari monosit besar dengan sitoplasma biru pucat sampai biru yang biasanya memenuhi kurang lebih setngah volume sel. Nukleus yang bervariasi bentuknya dapat terlihat bulat sampai oval dan kadang melekuk. Tidak seperti limfosit, kromatin tidak terkumpul kasar, tapi lebih bergranuler.
Penyebab leukositosis berdasarkan hitung jenis :
a. Neutrofilia
Neutrofilia adalah jumlah neutrofil meningkat melebihi nilai normal. Neutrofilia sebagian besar disebabkan oleh infeksi bakteri. Selain itu, neutrofilia dapat disebabkan oleh inflammatory bowel disease, rheumatoid arthritis, vasculitis (kawasaki syndrome), keganasan, pemberian kortikosteroid, dan splenektomi.
b. Limfositosis
Limfositosis adalah jumlah limfosit meningkat melebihi nilai normal. Infeksi virus biasanya menyebabkan limfositosis.
c. Monositosis
Monositosis adalah jumlah monosit meningkat melebihi nilai normal. Monositosis dapat disebabkan oleh infeksi bakteri (tuberkulosis, endokarditis bakerialis subakut, brucellosis), infeksi virus (mononucleosis), sifilis, infeksi protozoa, infeksi riketsia, keganasan, sarkoidosis, dan autoimun.
d. Basofilia
Basofilia adalah jumlah basofil meningkat melebihi normal. Basofilia dapat disebabkan oleh keganasan.
e. Eosinofilia
Eosinofilia adalah jumlah eosinofil meningkat melebihi normal. Eosinofilia dapat disebabkan oleh alergi, hipersensitivitas terhadap obat, infeksi parasit, infeksi virus, keganasan, dan kelainan kulit. Secara umum, pemeriksaan laboratorium adalah alat bantu untuk menegakkan diagnosis. Interpretasi hasil laboratorium harus memperhatikan kondisi klinis pasien. Demikian juga dengan hasil laboratorium leukositosis. Untuk mengetahui apakah disebabkan infeksi bakteri atau infeksi virus, harus menilai klinis pasien. Diskusikanlah dengan dokter anda untuk mengetahui penyebab leukositosis.
Metode yang digunakan pada praktikum kali ini adalah metode ulas darah. Metode ini digunakan karena metode ini mudah digunakan dan langkah dalam mengerjakannya pun tidak terlalu rumit. Tetapi, metode ini tidak efisien waktu karena dalam proses pewarnaan waktu yang dibutuhkan sangat lama agar larutan pewarna terserap sempurna dan juga tidak sedikit praktikum yang gagal pada saat pewarnaan karena tempat yang tidak steril.
V. KESIMPULAN DAN SARAN
A. Kesimpulan
Kesimpulan yang didapat setelah melakukan praktikum ini yaitu, antara lain :
1. Sel darah putih atau leukosit adalah sel yang membentuk komponen darah.
2. Berdasarkan ada atau tidaknya granula di dalam plasma, leukosit dibagi menjadi Leukosit bergranula (granulosit), antara lain Neutrofil, Eosinofil, dan Basofil dan Leukosit tidak bergranula (agranulosit), antara lain Limfosit dan Monosit.
3. Penyebab leukositosis berdasarkan hitung jenis neutrofilia, limfositosis, monositosis, basofilia, dan eosinofilia.
4. Monosil pada darah ikan yang diamati tidak ditemukan, yang banyak ditemukan yaitu jenis trombosit.
5. Metode ulas darah banyak digunakan karena mudah diilakukan dan efektif untuk melihat leukosit.
B. Saran
Saran untuk praktikum kali ini adalah sebagai berikut :
1. Diharapkan para asisten lebih mendampingi lagi praktikan.
2. Diharapkan para asisten menjelaskan langkah-langkah praktikum lebih jelas lagi sehingga praktikan dapat memahami dengan benar.
DAFTAR PUSTAKA
Affandi, R., D.S. Sjafei, M.F. Rahardjo, dan Sulistiono. 2005. Fisiologi Ikan (Pencernaan dan Penyerapan Makanan). Manajemen Sumber Daya Perairan, IPB.60 pp.
Afrianto, Eddy dkk. 1992. Pengendalian Hama dan Penyakit Ikan. Kanisius: Yogyakarta
Fujaya, Y. 2002. Fisiologi Ikan Dasar Pengembangan Teknologi Perikanan. Jakarta: Departemen Pendidikan Nasional.
Ghufran H,M. K Kordi. 2004. Penanggulangan Hama dan Penyakit Ikan. Jakarta. Rineka Cipta.
http://googlesearch.com/peredarandarahpadaikan
r
Jurnal lktiologi Intlonesia, Volume 3, Nomor !, Juni 2003
PENGARUH KADAR VITAMIN E DALAM PAKAN TERHADAP KUALITAS
TELUR IKAN PATIN (Pangasius hypophthalmus)
[Effect of dietary vitamin E on the egg quality of catfish (Pangasius hypophthalmus)l
Yulfiperiusl, Ing Mokoginta2 dan Dedi Jusadi2
t Jurusan Perikanan Fakultas Pertanian Universitas Hazairin, Bengkulu
t Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan lPB, Bogor
ABSTRAK
Percobaan ini dilakukan untuk menentukan pengaruh dari vitamin E (VE) dalam pakan induk ikan patin, Pangasius lrypophthalmus lerhadap
kualitas telurnya. Empat macam pakan yang digunakan yaitu yang mengandung protein relatifsama yaitu berkisar antara 37.68-38.05o/o dan
kalorinya 3066.66-3104.71 kkal/kg pakan, kandungan VE yang digunakan dalam pakan secara berturut-turut antara lain 28.08, 146.55,
189.65, dan 251.80 mg VE/kg pakan. Induk dipelihara dalam jaring yang ditempatkan dalam kolam beton. Setiap hari ikan diberi rnakan
sebanyak 4%. dari berat tubuh untuk selama 15 bulan. Selama periode pemberian pakan, tingkat kematangan gonad diperiksa, dan
pembuahan dilakukan secara buatan. Vitamin E dan kandungan lemak dalam telur yang dihasilkan meningkat sesuai dengan peningkatan
dosis VE dalam pakan. Vitamin E mempengaruhi gonad somatik indek, fekunditas, diameter telur, laju penetasan, larva abnormal, dan
jumlah total larva yang dihasilkan. Pakan yang mengandung 189.65 mg VElkg pakan menghasilkan tingkat penetasan yang tin ggi (78.77%),
jumlah total larta 332,339 ekor/kg induk, dan larva abnormal terendah (0.19%). Penambahan 189.65 mg,4
kata kunci: vitamin E, induk ikan patin Pangasius hypophthalmus
ABSTRACT
This experiment was conducted to determine the effect of dietary vitamin E (VE) on the diet of catfish broodstock, Pangasius
hypophthalmus on the egg quality. Four isonitrogenous (37.68-38.05% crude protein) and isocaloric (3066.66-3104.7 I kcal digestible
energylkg of feed) practical diets contained either 28.08, 146.55, 189.65, or 251.80 mg VE/kg of feed, respectively, were applied the to
catfish broodstock. The broodstock were cultivated in net cages held in earthen pond. Fishes were fed dally al 4o/o ofbody weight for l5
months using these diets. During feeding period, gonad maturation stage were examined, and egg ovulation was induced artificially. The
vitamin E and the total lipid contents in the eggs produced were increase as the dosage ofVE in the diet elevated. The vitamin E affected the
gonad somatic index, fecundity, egg diameter, hatching rate, abnormal larvae, and total number of larvae produced. Fishes fed on diet
containing 189.65 mg VE/kg offeed significantly produced the highest hatching rate (78.77%), total number oflarva 332,339/kg ofbrood
stock, and lowest abnormal larvae (0.19%). Supplementation 189.65 mg VE/kg offeed significantly improve the eggs quality ofcatfish.
Key words: vitamin E, catfish broodstock Pangasius hypophthalmus
PENDAHULUAN
Ikan patin Pangasius hypophthalmz,s mempunyai
nilai ekonomis untuk dibudidayakan. Akhirakhir
ini budidaya ikan patin berkembang dengan
pesat, baik di pulau Jawa, maupun di Kalimantan
dan Sumatera. Adanya usaha pembesaran yang
meningkat saat ini mengakibatkan naiknya permintaan
jumlah benih yang bermutu serta tersedia
setiap saat. Budidaya ikan patin di Bengkulu pada
saat ini baru mulai dikembangkan (komunikasi
pribadi dengan Kepala Balai Benih Ikan), dan
benihnya didatangkan dari Lubuk Linggau
(Sumatera Selatan). Menurut Khaidir (2001),
produktivitas benih yang dihasilkan di Sumatera
Selatan rendah karena masih rendahnya nilai derajat
pembuahan 10-75oA, dan derajat tetas telur 10*60%.
Salah satu penyebab rendahnya derajat tetas
telur diduga karena tidak sesuainya kualitas pakan
induk yang diberikan. Pakan yang digunakan saat
ini merupakan pakan komersial untuk pembesaran
ikan air tawar, seperti ikan mas dan lele. Jadi, untuk
mendapatkan benih yang cukup dan bermutu baik
adalah dengan memperbaiki kualitas telur. Kualitas
telur dapat ditingkatkan arftara lain dengan
melakukan perbaikan kualitas pakan induk. Salah
satu unsur nutrien pakan yang harus ada dalam
pakan induk untuk meningkatkan reproduksinya
adalah vitamin E (o-tokoferol).
1l
YulJipeius, et al - Pengaruh Kadar Vitamin E dalam Pakan Terhadap Kualitas Telur Ikan Patin (Pangasius hypophthalmus)
Vitamin E (VE) bertungsi sebagai pemelihara
keseimbangan intraselluler dan sebagai antioksidan
(Alava et al., 1993). Sebagai antioksidan, vitamin E
dapat melindungi lemak supaya tidak teroksidasi,
misalnya lemak atau asam lemak yang terdapat pada
membran sel, sehingga proses embryogenesis
berjalan dengan normal dan hasil reproduksi dapat
ditingkatkan. Kebutuhan vitamin E untuk reproduksi
berbeda untuk setiap spesies ikan. Ikan red sea
bream memerlukan 42 mglkg pakan (Watanabe et
a/., 1985), ikan bandeng 40 mgkgpakan (Prijono er
al., 1997), sedangkan untuk ikan patin sampai saat
ini belum dilakukan.
Percobaan ini bertujuan untuk mengetahui
pengaruh kadar vitamin E dalam pakan induk ikan
patin terhadap kualitas telur yang dihasilkan.
Dengan hipotesis bahwa pemberian vitamin E
dalam pakan induk ikan patin Pangasius
hypophthalmas dengan kadar yang tepat dapat
meningkatkan kualitas telurnya.
METODOLOGI
Percobaan dilaksanakan mulai bulan Desember
1999 hingga Februari 2001, bertempat di Kolam
Percobaan dan Laboratorium Nutrisi Ikan, Fakultas
Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian
Bogor.
Pemeliharaan dan Pengumpulan Data
Vitamin E yang digunakan sebagai perlakuan
adalah dalam bentuk a-tokoferol dengan tingkat
kemurniannya 50Yo, (ENSAFAL JUVELA FOOD
500). Untuk tiap perlakuan, sumber vitamin E
tersebut ditambahkan sebanyak 0, 0.03, 0.06, dan
0.12 9/100 g pakan. Komposisi bahan penyusun
pakan disajikan pada Tabel 1
Setelah pakan percobaan dibuat, dilakukan
analisis proksimat untuk mengetahui kandungan
nutrien pakan yang sebenarnya. Komposisi nutrien
yang diperoleh sesuai dengan kandungan nutrien
pakan untuk induk patin yang telah dilakukan oleh
Mokoginta et al., (2000). Vitamin E yang ada di
dalam pakan perlakuan masing-masing adalah
sebesar 28.08, 146.55, 189.65 dan 251.80 mg/kg
pakan. Hasil analisis proksimatnya disajikan pada
Tabel2.
Induk ikan yang digunakan berbobot antara
2.18-2.42 kg. Ikan dipelihara dalam jaring
berukuran 4 x 4 x2 m. Setiap jaring berisi 5 ekor
betina (berukuran 400 - 450 mm) dan I ekor jantan
(berukuran 400 mm). Jaring diletakkan dalam kolam
berukuran 10 x 20 m. Untuk meyakinkan bahwa
ikan tersebut sudah berkembang gonddnya, terlebih
dahulu dilakukan pengambilan telur ikan dengan
bantuan kanulasi pada setiap induk betina.
Tabel 1. Komposisi pakan penelitian untuk induk ikan patin, Pangasius hypophthalmus
Pakan/kadar vit. E (me/ks nakan)
Bahan Pakan (7o) 28.08 146.55 189.65 251.80
Tepung Ikan
Tepung Kedele
Pollard
Minyak Jagung
Minyak lkan
Minyak Kelapar)
Cholin Chlorida2)
Mineral Mix2)
Vitamin Mix2) Tanpa VE
Vitamin E 3)
CMC4)
Cellulosa
41.63
18.90
21.45
2.00
1.50
4.55
0.50
5.87
0.62
0.00
2.00
0.98
41.63
r8.90
21.45
2.00
r.50
4.55
0.50
5.87
0.62
0.03
2.00
0.95
41.63
18.90
21.45
2.00
1.50
4.55
0.50
5.87
0.62
0.06
2.00
0.92
41.63
18.90
21.45
2.00
1.50
4.55
0.50
5.87
0.62
0.t2
2.00
0.86
t2
a
Jurnal lHiologi Indonesia, Volume 3, Nomor l, Juni 2003
Tabel2. Komposisi proksimat, kadar vitamin E, dan energi pakan penelitian (o/o bobot kering)
Pakan/kadar vit. E (me/ke Bahan Pakan (%o) nakan)
l46.ss 189.65 251.80
Kadar protein
Kadar lemak
Kadar abu
Serat kasar
BETN
VE (mg/kg pakan)
DE (kkal/kg pakan)r)
C/P (kkal/g protein)r)
37.82
12.5t
l6.ll
4.t2
29.31
28.08
3069.76
8. l2
38.05
13.03
16.25
3.92
28.57
146.55
3101.43
8. l5
37.75
12.61
17.12
3.56
28.96
189.65
3066.66
8.12
37.68
13.11
16.71
3.81
28.69
251.80
3104.71
8.24
Keterangan: l)DE:digestibleenergyyangdiperhitungkandari: I gprotein:3.5kcal; I g lemak:8.1
kcal; 1 g karbohidrat : 2.5 kcal (NRC, 1983)
Tabel 3. Kandungan vitamin E dalam telur, larva 0 hari (LoH), dan larva 2 hari (L2H) (ptg/g
bobot kering)
Pakan/kadar vit. E
(mg/kg pakan) Telur LzH
28.08
146.55
189.65
251 .80
187.05 r 0.17
193.36 t2.85
245.02 ! 3.31
261.35 + 0.15
174.48 X0.73
176.05 r l.5l
190.32 r 0.03
244.54 ! t.t2
141.04 r 0.03
142.92 t 1.07
160.89 r 0.35
t66.t0 ! 4.17
Pengamatan tingkat kematangan gonad (TKG)
mulai dilakukan setelah dua bulan ikan diberi pakan
uji. Pengamatan TKG selanjutnya dilakukan setiap
lima belas hari, atau bergantung pada saat
pengamatan sebelumnya apakah pada setiap jaring
untuk minggu berikutnya sudah ada ikan yang
matang gonadnya. Untuk meyakinkan bahwa induk
telah matang gonad, dilakukan pengambilan telur
ikan dengan bantuan kanulasi. Telur-telur hasil
kanulasi tersebut dimasukkan ke dalam larutan
transparansi. Induk yang sudah matang gonad dan
siap untuk disuntik dicirikan dengan ukuran telur
yang besar dan seragam, dan tidak terdapat telur
yang benin g/transparan.
Parameter yang diamati meliputi: kadar
vitamin E di telur, larva 0, dan 2 hari; kadar lemak,
protein, dan air di telur, larva 0 hari, dan 2 hari;
gonad somatik indek (GSD), fekunditas, berat telur,
diameter telur, derajat tetas telur, larva abnormal,
dan total larva yang dihasilkan.
HASIL DAN PEMBAHASAN
Kadar vitamin E pada telur, larva 0 hari, dan 2
hari dapat dilihat pada Tabel 3. Kadar vitamin E
dalam telur meningkat sejalan dengan adanya
peningkatan kadar vitamin E dalam pakan induk.
Kadar vitamin E di telur dari perlakuan 146.55
mg/kg pakan (pakan B) meningkat sebesar 6.31
ILCIC bobot kering telur dibandingkan dengan
perlakuan 28.08 mg/kg pakan (pakan A), perlakuan
189.65 mg/kg pakan (pakan C) meningkat sebesar
51.66 1tg/g bobot kering telur dibandingkan dengan
perlakuan 146.55 mg/kg pakan (pakan B), dan
perlakuan 251.80 mg/kg pakan (pakan D) rneningkat
sebesar 15.33 plg bobot kering telur dibandingkan
dengan perlakuan 189.65 mg/kg pakan (pakan C).
Jadi nilai ini jauh lebih kecil dibandingkan
peningkatan dari perlakuan 146.55 (pakan B) ke
189.65 mg/kg pakan (pakan C). Hasil percobaan ini
menunjukkan bahwa pemberian kadar vitamin E di
pakan memberikan pengaruh terhadap kandungan
l3
Yuffiperius, et al -Pmgaruh Kadar Vitamin E dalam Pakan terhadap Kualitas Telur Ikan Patin (Pangasius hypophthalmus)
vitamin E di telur. Pada LOH danL2H,juga terjadi
peningkatan kandungan vitamin E sejalan dengan
peningkatan kandungan vitamin E di dalam pakan
induk. Dari percobaan ini diketahui bahwa
kandungan vitamin E di telur dari masing-masing
perlakuan digunakan selama proses embryogenesis
berlangsung dan perkembangan larva; seperti yang
diperlihatkan dengan terjadinya pemrrunan kandungan
vitamin E di telur sampai larva2hari.
Selanjutnya pada Tabel 4 disajikan komposisi
proksimat telur, larva 0 dan 2 hari. Pada tabel
tersebut terlihat bahwa adanya pemberian vitamin E
dalam pakan induk ikan patin akan memberikan
peningkatan kandungan lemak di dalam telur.
Peningkatan kandungan lemak di telur sejalan
dengan peningkatan kandungan vitamin E di dalam
pakan. Induk yang diberi pakan A (28.08 mgkg
pakan) menghasilkan telur dengan kadar lemak yang
terendah. Naiknya kadar vitamin E dalam pakan
induk juga akan menaikkan kadar lemak di telur.
Pada masa embryogenesis dan pertumbuhan larva,
terlihat bahwa kandungan lemak dari masingmasing
perlakuan dimanfaatkan, tetapi tingkat
pemanfaatannya untuk masing-masing perlakuan
tidak sama. Hal ini diperlihatkan dengan terjadinya
penumnan kandungan lemak dari telur sampai larva
2 hari. Dan Tabel 4 terlihat pula bahwa kadar
protein di telur berkisar antara 54.12-59.48yo,
sedangkan kadar protein dan air dari larva umur 0
hari lebih tinggi dari telur, kadar lemaknya lebih
rendah. Hal ini menunjukkan bahwa lemak
berfungsi sebagai sumber energi utama selama
proses embryogenesis, sedangkan penggunaan
protein sebagai sumber energi sangat sedikit.
Untuk nilai gonad somatik indek, fekunditas,
bobot telur, diameter telur, derajat tetas telur, larva
abnormal, dan jumlah larva yang dihasilkan
disajikan pada Tabel 5.
Tabel 4. Kadar lemak, protein, abu, dan air dalam telur, larva 0 hari (LoH), danlawa2
hari (L2H) (dalam % bobot kering)
Pakan/kadar VE
(mg/kg pakan) Telur LzH
28.08
146.ss
r89.6s
2s1.80
Lemak
Protein
Abu
Air
Lemak
Protein
Abu
Air
Lemak
Protein
Abu
Air
Lemak
Protein
Abu
Air
38.09
59.10
2.81
71.81
39.09
58. l7
2.74
70.85
40.04
59.48
0.48
72.90
41.90
54.12
3.98
73.46
25.01
60.80
14.19
86.31
33.3 8
60.45
6.17
87.51
22.45
6r.63
ls.92
84.34
25.03
65.33
9.64
90.28
18.00
61.16
20.84
86.42
22.83
61.40
15.77
87.98
20.31
61.91
17.78
89.1 4
23.69
71.06
5.25
90.38
t4
Jurnal lktiologi Indonesia, Volume 3, Nomor I, Juni 2003
Tabel 5. Nilai rata-rata gonad somatik indek (GSI), fekunditas (F), diarneter telur (DT), derajat tetas telur
(DTT), larva abnormal (LA), bobot telur (BT), dan total larva yang di produksi (TL)
Parameter Pakan/kadar vitamin E (me/ke Dakan)
146.55 189.65 251.80
GSr (%)
F (butir&g induk)
BT (pglbtr.)
DT(mm)
Drr(%)
LA(o/o)
TL (I larva/kg induk)
12.62 + l.5t'
625,964
+ 2t8,478^
218.7+ 77.02u
t.l2+ 0.07'
40.81r 17.874
0.70t 0.27^
231,968x54,282^
6.45 t 0.64b"
3t9,6st
r 28,178b
203.3+ 33.07',
1.17t0.04'
69.47t9.80b
0.28+ 0.23b
8.54 + 2.13b
420,t24
t 60,884"b
201.6!23.56^
l.19+ 0.05"
78.17x3.51b
0.191 0. l3b
10.41+2.61"b
418,497
+ 55,343ub
248.4+ 48.784
l.l4+ 0.10"
33.38+ 28.91a
0. l8+ 0.25b
220,433t18,385" 332,339t3,569b t29,634+12,625^
Keterangan : Angka yang diikuti oleh huruf supercript yang sama menunjukkan tidak ada perbedaan (P>0.05).
Vitamin E dan asam lemak esensial dibutuhkan
secara bersamaan untuk pematangan gonad ikan.
Makin tinggi kadar vitamin E dalam pakan induk
akan diikuti pula dengan makin tingginya
kandungan vitamin E di telur. Selanjutnya,
peningkatan kadar vitamin E dalam telur akan
diikuti pula oleh peningkatan kandungan lemak
dalam telur. Lemak dapat berfungsi sebagai sumber
energi dan asam lemak esensial. Seperti sudah
diketahui bahwa salah satu fungsi dari vitamin E
adalah sebagai zat antioksidan yang dapat mencegah
terjadinya oksidasi lemak (Halver, 1989).
Watanabe et al., (1985) menambahkan vitamin
E sebesar 0.441, 1.473, 0.647, 0.420, dan 0.402
mg/g pakan pada ikan red sea bream, ternyata terjadi
penyimpanan vitamin E dalam telur berturut-turut
sebesar 22.7, 31.5, 15.6, 16.1, dan 16.4 m{g.
Tingkat penyimpanan tersebut berkorelasi dengan
pemberian vitamin E dalam pakan. Pada oosit atau
telur yang mengandung kadar a-tokoferol relatif
tinggi, kemungkinan peluang teroksidasinya lipid
relatif lambat dibandingkan dengan yang rendah.
Menurut Linder (1992) anion superoksida
diproduksi oleh interaksi dari berbagai substrat yang
dapat teroksidasi oleh molekul oksigen, dengan
melibatkan oksidase xantin dan sitokrom P-450.
Superoksida dikonversi menjadi peroksida atas
bantuan enzim dismutase superoksida yang
membutuhkan Cu dan Zn, atau berinteraksi dengan
peroksida. Peroksida juga membentuk beberapa
rantai radikal; radikal-radikal tersebut dapat memulai
reaksi berantai panjang dalam dinding sel yang
melibatkan asam lemak tidak jenuh dan fosfolipid.
Vitamin E menghambat proses-proses tersebut.
Vitamin E juga diperlukan selama proses
embryogenesis dan perkembangan larva 0, sefta 2
hari. Selama proses embryogenesis dan
pertumbuhan larva terjadi penumnan kandungan
vitamin E mulai dari telur sampai larva2 hari seperti
terlihat pada Tabel 3. Hubungan antara perkembangan
embrio dengan vitamin E merupakan
hubungan melalui mediator asam lemak tak jenuh.
Fungsi lain dari asam lemak esensial dalam proses
embryogenesis adalah merupakan prekursor dari
senyawa prostaglandin yang berperan sebagai
hormon. Menurut Leray et al., (1985) dqlam
Mokoginta et al., (2000), proses pengenalan antar
sel dalam telur dipengaruhi oleh prostaglandin. Jika
telur kekurangan asam lemak ensensial, maka
berlangsungnya proses tersebut akan gagal (pada
pembelahan sel ke 16, 32, dan organogenesis), dan
akan menghasilkan derajat tetas telur yang rendah.
Menurut Takeuchi et al., (1992) bahwa kekurangan
vitamin E dalam pakan dapat menyebabkan
kandungan lemak di hati dan otot berkurang,
sedangkan lemak berfungsi untuk menghasilkan
asam lemak. Komposisi asam lemak, terutama asam
lemak esensial pada membran sel akan mempel5
Yulfiperius, et al - Pengaruh Kadar Vitamin E dalam Pakan terhadap Kualitas Telur Ikan Palin (Pangasius hypophthalmus)
ngaruhi fluiditas dan permeabilitas membran
(Divakran dan Venkatraman, 1997 dalam
Mokoginta et al., 2000). Selanjutnya, fluiditas
membran dapat mempengaruhi aktivitas enzim pada
membran, serta akan mengubah proses fisiologis sel.
Menurut Kamler (1992), lemak digunakan
sebagai bahan penyusun struktur butiran lemak dan
butiran kuning telur. Menurut Momensen dan Walsh
(1983), material lemak adalah sebagai bahan
penyusun sejumlah besar fosfolipid yang ditimbun
dalam sitoplasma dan kutub anima telur,
Selanjutnya Kamler (1992) menyatakan bahwa
lemak yang ditimbun dalam telur berperan juga
sebagai sumber energi dan pengendali daya apung
telur, embrio dan larva. Dari hasil percoban terlihat
bahwa selama proses embryogenesis dan
pertumbuhan larva terjadi penurunan kandungan
lemak mulai dari telur sampai larva 2 hari,
sedangkan kadar protein perubahannya tidak sebesar
pada lemak. Hal ini menunjukkan bahwa lemak
merupakan sumber energi utama selama
embryogenesis dan selama 2-hari pertumbuhan
larva. Karena peranan lemak yang cukup besar,
maka lemak dalam telur harus diupayakan ada dan
dijaga keberadaannya agar selalu dalam kondisi
optirnal. Salah satu jalan adalah dengan memberikan
vitamin E kedalam pakan yang diberikan kepada
induk.
Peningkatan nilai gonad somatik indek,
fekunditas, dan diamter telur dapat disebabkan oleh
perkembangan oosit. Tingginya nilai gonad somatik
indek pada percobaan ini diikuti dengan tingginya
fekunditas, dan kecilnya ukuran diameter telur.
Seperti pada perlakuan 28.08 mdkg pakan
menghasilkan kandungan protein 59.01, dan lemak
di telur 38.09% dengan nilai gonad sornatik indek
12.62yo, fekunditas 625, 964 butirlkg induk, dan
diameter telur rata-rata 1.12 mm. Hal ini diduga
karena adanya perbedaan kandungan nutrien di telur
seperti protein, dan lemak. Menurut Harper et al.,
(1980) bahwa kadar protein yang tinggi maka
kepadatan lipoprotein juga tinggi dan kadar lipid
berkurang, dan ukuran partikel menjadi lebih kecil.
Nilai gonad somatik indek pada penelitian ini
berkisar 6.45-12.62%, sedangkan nilai gonad
somatik indek ikan patin betina yang disuntik
sebanyak 6 kali dengan menggunakan dosis HCG 50
IU,&g berkisar 5.1-13.3o/o, dengan diameter telur
1.0-1.6 mm pada nilai gonad somatik indek 13.3%
(Siregar, 1999). Selanjutnya Effendie (199'7)
menyatakan bahwa tiap-tiap spesies ikan pada
waktu pertama kali gonadnya menjadi matang tidak
sama, demikian pula dengan ikan yang sama
spesiesnya. Menurut Verakunpiriya et al., (1996),
vitamin E berperan sangat penting untuk
perkembangan gonad. Selanjutnya, pemberian
vitamin E dengan kadar 121.4 - 471.8 pg/g pakan
pada ikan yellow tail menghasilkan perkembangan
gonad yang lebih baik dari pakan tanpa vitamin E.
Hasil penelitian Lamidi et al. (1996) terhadap
ikan beronang menyatakan bahwa tingkat
kematangan gonad tercepat diperoleh dengan
memberikan vitamin E 30 mg/kg pakan, sedangkan
dalam penelitian ini diperoleh dengan pemberian
vitamin E 146.55 mglkg pakan. Prijono et al. (1991)
mengemukakan bahwa induk ikan bandeng yang
diimplan vitamin E dengan dosis 100 pg dalam
bentuk pelet memberikan hasil yang terbaik untuk
mempercepat pematangan gonad. Untuk ikan
gurami kematangan gonad dicapai dengan
memberikan vitamin E sebesar 302.01 mg/kg pakan
(Basri, 1997), sedangkan ikan lele dengan dosis
211.60-308.16 VelS pakan (Syahrizal, 1998).
Pemberian vitamin E dalam pakan yang diberikan
pada induk menghasilkan fekunditas relatif berkisar
3 19,65 I -625,964 butir kg induk. Menurut Effendie
(1997), perbedaan fekunditas dari suatu spesies dan
ukuran ikan yang sama bisa terjadi karena masingmasing
mempunyai kandungan lemak yang berbeda.
Besar kecilnya nilai fekunditas yang dihasilkan ada
hubungannya dengan diameter telur. Percobaan ini
menghasilkan diameter telur 1.12-1.19 mm. Besar
kecilnya diameter telur erat hubungannya dengan
adanya akumulasi nutrien dalam telur itu sendiri,
dan hasil percobaan mendapatkan bobot telur per
butir 201.6-248.4 pg. Komponen utama bahan baku
l6
I
telur antara lain protein, lemak, dan abu (Kamler,
1992). Hasil proksimat di telur pada percobaan ini
untuk lemak 38-41.90yo, protein 54.12-59.48Yo, dan
abu 0.48-3.98%. Sedangkan hasil proksimat di telur
ikan red sea bream untuk lemak 28.16-30.25oh,
protein 62.14-67.23%, dan abu 4.85-6.09%
(Watanabe et a1.,1984)
Kualitas telur yang baik dapat juga dilihat dari
derajat tetas telur, abnormalitas larva, dan jumlah
larva yang dihasilkan. Penambahan vitamin E dalam
pakan sampai batas tertentu akan menghasilkan
derajat tetas telur yang tinggi. Seperti terlihat pada
percobaan ini, terjadi peningkatan derajat tetas telur
sesuai dengan meningkatnya kadar vitamin E di
dalam pakan dari 28.08 sampai 189.65 mg/kg
pakan. Sedangkan pada perlakuan 251.80 mg VE/kg
pakan tedadi penurunan derajat tetas telur (33.38%).
Hal ini diduga ada kaitannya dengan bobot telur dan
kandungan materi yang terdapat di dalam telur itu
sendiri. Sedangkan nilai derajat tetas telur terbaik
untuk ikan gurami adalah dengan menambahkan
vitamin E sebesar 338.72 mg/kg pakan (Basri,
1997), ikan lele 2l I .60-308.I 6 Vele pakan
(Syahrizal, 1998). Selanjutnya Tacon (1987)
menyatakan bahwa kelebihan pemberian stokoferol
dapat menyebabkan kematian pada ikan
dan penurunan perhrmbuhan, karena a-tokoferol
bersifat toksit dalam hati. Keberhasilan suatu
penetasan tidak hanya ditentukan oleh derajat
tetasnya saja, tetapi juga kualitas larva yang
dihasilkan, seperti tingkat abnormal larva. Hasil
percobaan menunjukkan bahwa semakin tinggi
kadar vitamin E dalam pakan, maka larva abnormal
semakin rendah. Dimana larva abnormal tertinggi
diperoleh sebesar 0.70% pada pakan A (28.08
mg/kg pakan) dan yang terendah sebesar 0.18%
pada pakan D (251.80 mg/kg pakan). Jadi jelas
bahwa induk yang diberi pakan yang rendah vitamin
E akan menghasilkan larva abnormal yang tinggi.
Defisiensi vitamin E pada ikan dapat menyebabkan
penyakit distrofi otot, degenerasi lemak hati,
anemia, pendarahan dan berkurangnya fertilisasi
(NRC, 1983).
Jurnal ll
peningkatan derajat tetas telur, dan larva yang
dihasilkan. Hasil percobaan memperlihatkan bahwa
ada hubungan antara kandungan vitamin E dalam
pakan dengan nilai derajat tetas telur, dan larva yang
dihasilkan. Dari Tabel 5 di atas menunjukkan bahwa
jumlah larva yang terbesar dihasilkan oleh
perlakuan 189.65 mg/kg pakan 332,339 larva/kg
induk. Dari hasil dan pembahasan di atas, dapat
diambil suatu kesimpulan bahwa dengan pemberian
kadar vitamin E (o-tokoferol) semi murni sebesar
189.65 mg/kg pakan adalah yang terbaik untuk
meningkatkan kualitas telur ikan patin.
KESIMPULAN DAN SARAN
Berdasarkan hasil percobaan, untuk meningkatkan
kualitas telur ikan patin, Pangasius
hypophthalmus, maka kadar vitamin E dalam pakan
yang paling baik adalah 189.65 mg/kg pakan. Sesuai
dengan hasil percobaan, untuk meningkatkan
kualitas telur ikan patin, maka disarankan untuk
menambahkan vitamin E dalam pakan induk dengan
dosis sebesar 189.65 mglkg pakan.
DAFTARPUSTAKA
Alava VR, A Kanazawa, S Thesima and S Koshio.
Effects of dietary vitamin A, E, and C on the
ovarian development of Penaeus japonicus.
Nippon Suisan Gakkaishi. 59 (7): 1235-1241.
Basri Y. 1997. Penambahan vitamin E pada pakan
buatan dalam usaha meningkatkan potensi
reproduksi induk ikan gurame (Osphronemus
gouramy Laccepede). Tesis, Program
Pascasarj ana, Institut Pertanian Bogor.
Effendie MI. 1997. Metode biologi perikanan.
Yayasan Pustaka Nusatama, Yokyakarta..
Halver JE. 1989. The vitamins, pp. 32-102.In: Fish
nutrition, J.E. Halver (ed.). Academic Press,
Inc., California.
Harper HA, VW Rodwell and PA Mayes. 1980.
Biokimia. (Alih bahasa M. Muliawan).
Review of Physiological Chemistry. Lange
Medical Publication. Los Altos, California.
t7
YulJiperius, et al -PengaruhKadar Vitamin E dalam Pakan terhadap Kualitas Telur Ikan Patin (Pangasius hypophthalmus)
Kamler E. 1992. Early life history of fish, an
energetics approach. Chapman and Hall.
London.267 pp.
Khaidir A. 2001. Pengaruh vitamin C dalam bentuk
L-Askorbil-2-fosfat Magnesium sebagai
sumber vitamin C dalam pakan terhadap
kualitas telur ikan patin, Pangasius
hyp ophthalmzs. Tesis, Pascasarj ana, IPB.
Lamidi Asmanelli dan Dalviah. 1996. Pengaruh
penambahan vitamin E pada pakan terhadap
pertumbuhan dan tingkat kematangan gonad
ikan beronang (Signatus canaliculatus). Jltn.
Pen. Perikanan tI (4). 23-29.
Linder MC. 1992. Biokimia nuhisi dan metabolisme
(terjemahan). Universitas lndonesia,
Jakarta.
Mokoginta I, D Jusadi, M Setiawati dan MA
Suprayudi. 2000. Kebutuhan asam lemak
esensial, vitamin dan mineral dalam pakan
induk Pangasius suchi untuk reproduksi.
Hibah Bersaing VII/I-2 Perguruan Tinggi/
Tahun Anggaran 199812000. Institut Pertanian
Bogor. Laporan Akhir.
Momensen TP and P J Walsh. 1983. Vitellogenesis
and oosit assembly, p.70-93. In: W.S. Hoar,
and Randal (ed.). Fish physiology. Vol XIA.
Academic Press Inc. Harcourt Eraco
Jovanovich. Publisher San Diego New York,
Barkeley Boston.
NRC (National Research Council). 1983. Nutrient
requirements of warmwater fishes and
shellfishes. National Academy of Science
Press, Washington D.C.
Prijono A, K Sugama, ZI Azwar, T Setiadharma dan
T. Sutarmat. l99T.Implantasi vitaminE untuk
memacu pematangan gonad induk ikan
bandeng (Chanos chanos Forskal). Jurnal
Penelitian Perikanan Indonesia. 3 (l) :21 - 28.
Siregar M. 1999. Stimulasi pematangan gonad bakal
induk betina ikan jambal siam (Pangasius
hypophthalmzs F) dengan hormon hCG. Tesis,
Program Pascasarjana, Institut Pertanian
Bogor.
Steel GD and JH Torrie. 1980. Principles and
prosedure of statistics. A biometrical
approach, Mc Graw-Hill book Company, Inc.,
New York, 633 pp.
Syahrizal. 1998. Kadar optimum vitamin E (crtokoferol)
dalam pakan induk ikan lele,
Clarias batrachus Linn. Tesis, Program
Pascasarj ana, Institut Pertanian Bogor.
Tacon AGJ. 1987. Nutrition and feeding of famed
fish and shrimp-A training Manual. 1. The
essential Nutrients. Food and Agriculture
Organization of The United Nations Brasilla,
Brazil.ll7 pp.
Takeuchi T, K Watanabe, S Satoh and T Watanabe.
1992. Requirement of Grass Carp fingerling
for cr-tocopherol. Nippon Suisan Gakkaishi.
58 (9): 1743-1749.
Verakunpiriya V, T Watanabe, K Musshiake, V
Kiron, S Shuichi, and T Takeuchi. 1996.
Effect of broodstock diets on chemical
componenets of milt and eggs produced by
yellowtail. Fihseries Scientific Japan. 62 (4) :
1207 -t215.
Watanabe T, T Arakawa, C Katajima and S Fujita.
1984. Effect of nutritional quality of
broodstock diets on reproduction in red sea
bream. Nippon Suisan Gakkaishi. 50 (3) : 495-
501.
Watanabe T, T Koizumi, H Suzudi, S Satoh, T
Takeuchi, N Yoshida, T Kitada and Y
Tsukashima. 1985. hnprovement of quality of
red sea bream eggs by feeding broodstock on a
diet containing cuttlefish meal or on raw krill
sortly before spawning. Bull. Jpn. Soc. Sci.
Fish.5l : 15ll-1521.
18
Protozoa adalah sekelompok organisme yang bersel satu, jumlahnya kurang lebih 50.000 species yang telah diidentifikasi dan 20.000 species yang berupa fosil. Ribuan spesies dideskripsikan sebagai organisme yang bebas sedangkan lainnya hidup secara parasit pada hewan lain.
Protozoa hidup di lingkungan yang basah, misalnya dalam air baik tawar, maupun air bergaram atau dalam tanah yang basah sampai kedalaman kurang lebih 20 cm, dalam tubuh manusia atau hewan tingkat tinggi lainnya yang bercairan, atau di semua tempat di mana saja. Jumlah hewan protozoa dalam suatu tempat sering sangat menakjubkan, misalnya dalam suatu kolam dapat mencapai jutaan hewan, bahkan milyaran. Alat gerak protozoa bermacam-macam dari yang sederhana berupa pseudopodia sampai flagella dan silia. Pseudopodia selalu dibentuk dari ektoplasma, walaupun endoplasma akan mengikutinya dan pada tubuh protozoa akan dijumpai plastida dan benda-benda sejenisnya, misalnya khromatofora, piroid, stigmata, pigmen dan alat-alat simbiotik.
Hewan paling sederhana di dunia ini adalah protozoa. Disebut paling sederhana karena hewan tersebut hanya terdiri dari satu sel dan biasanya berukuran mikroskopis antara 5-5.000 mikron, rata-rata antara 30-300 mikron (Sugiarji, 2005: 26).
Protozoa berasal dari bahasa yunani, yaitu protos yang artinya pertama dan zoon yang artinya hewan. Protozoa merupakan hewan bersifat uniseluler, dimana setiap satu sel protozoa merupakan keseluruhan dari organisme itu sendiri. Protoplasma dari protozoa dapat mengadakan modifikasi-modifikasi atau penonjolan-penonjolan yang dapat bersifat sementara atau tetap (Hartati, 2009: 17).
Protozoa merupakan sekelompok makhluk yang bersel tunggal, yang heterogen, meliputi kurang lebih 50.000 species yang telah diberi nama, dan 20.000 species yang telah berupa fosil. Ribuan species telah berhasil dideskripsikan sebagai makhluk yang hidup bebas dan sebagian lainnya hidup secara parasit pada hewan lain, terutama hewan tingkat tinggi. Jumlah hewan protozoa dalam suatu tempat sering sangat menakjubkan, misalnya dalam suatu kolam dapat mencapai jutaan hewan, bahkan milyaran (Maskoeri, 1984: 31).
Protozoa yang jumlahnya besar itu mempunyai ciri-ciri yang berbeda, dan beberapa ahli membagi menjadi 3 kingdom dan puluhan phyla. Sehubungan dengan hal tersebut Whittaker (1969) mencoba mengklasifikasikan protozoa yang beraneka ragam itu satu kingdom lain. Seperti kita ketahui bahwa hewan pada masa lalu hanya terdapat satu kingdom yaitu kingdom Animalia, yang banyak diterima orang (Maskoeri, 1984: 31).
Seperti halnya sel makhluk hidup lain, sel protozoa terdiri dari protoplasma yang dibungkus membran sel (plasmolemma) yang berfungsi sebagai “dinding sel”. Protoplasma terdiri dari dua komponen utama yaitu inti sel (nukleus) dan isi sel atau sitoplasma. Dengan menggunakan mikroskop akan terlihat bahwa sitoplasma terdiri atas dua bagian. Bagian terluar tampak homogen dan jernih (hyalin) disebut ektoplasma, dan bagian dalam disebut endoplasma. Dalam endoplasma terlihat benda-benda seperti butir-butir kecil dan serabut benang halus yang ternyata adalah materi mengandung protein, karbohidrat, lemak, garam mineral, serta organel. Protozoa tidak memiliki organ sejati seperti alat pencernaan dan alat reproduksi sebagaimana layaknya metazoa. Akan tetapi mampu melakukan semua kegiatan biologis seperti bergerak, makan, bernapas, dan reproduksi. Proses-proses tersebut dilakukan oleh bagian di dalam sel, yang disebut vakuola kontraktil (Sugiarji, 2005: 26).
Sebagian besar Protozoa berkembang biak secara aseksual (vegetatif) dengan cara : pembelahan mitosis dan spora. Pembelahan mitosis (biner), yaitu pembelahan yang diawali dengan pembelahan inti dan diikuti pembelahan sitoplasma, kemudian menghasilkan 2 sel baru. Pembelahan biner terjadi pada Amoeba, Paramaecium. sp, dan Euglena. sp. Paramaecium membelah secara membujur/ memanjang setelah terlebih dahulu melakukan konjugasi. Euglena membelah secara membujur /memanjang (longitudinal). Spora, Perkembangbiakan aseksual pada kelas Sporozoa (Apicomplexa) dengan membentuk spora melalui proses sporulasi di dalam tubuh nyamuk Anopheles. Spora yang dihasilkan disebut sporozoid. Perkembangbiakan secara seksual pada Protozoa dengan cara : konjugasi dan sporozoa. Konjugasi, Peleburan inti sel pada organisme yang belum jelas alat kelaminnya. Pada Paramaecium. sp mikronukleus yang sudah dipertukarkan akan melebur dengan makronukleus, proses ini disebut singami. Peleburan gamet Sporozoa (Apicomplexa) telah dapat menghasilkan gamet jantan dan gamet betina. Peleburan gamet ini berlangsung di dalam tubuh nyamuk (Anonim, 2010).
Pernapasan atau pertukaran oksigen dan karbondioksida berlangsung secara difusi karena adanya perbedaan tekanan gas di dalam sel dan di luar sel. Protozoa bergerak dengan menggunakan kaki semu (pseudopodia), cilia, atau flagella. Pseudopodia berasal dari penjuluran sitoplasma, dan bersifat sementara terutama untuk berpindah tempat atau makan. Gerakan tersebut timbul akibat dari kontraksi protoplasma memanjang dan memendek secara lambat. Protozoa yang bergerak dengan pseudopodia adalah dari kelas Sarcodina. Pseudopodia dibagi dalam empat tipe atas dasar bentuk penjuluran protoplasmanya yaitu; lobopodia, filopodia, reticulopodia, dan axopodia (Sugiarto, 2005: 26-27).
Cilia atau bulu getar merupakan alat gerak yang berbentuk bulu-bulu halus, biasanya banyak dan selalu bergetar. Ada beberapa tipe-tipe cilia, yaitu; Holotrich, Heterotrich, Peritrich, dan Hypotich (Hartati, 2009: 28).
Flagela (bulu cambuk) merupakan alat gerak berupa protoplasma panjang seperti cambuk, berjumlah satu atau lebih tetapi umumnya dua helai. Flagela berfungsi sebagai alat gerak maju dengan kecepatan antara 15 sampai 300 mikron per detik (Sugiarto, 2005: 28).
Cara makan protozoa ada 3 macam; yaitu autotrof, heterotrof, dan amfitrof. Autotrof artinya dapat mensintesis makanan sendiri seperti layaknya tumbuh-tumbuhan dengan jalan fotosintesis. Protozoa yang tidak dapat melakukan fotosintesis, mendapatkan makanannya dengan jalan menelan benda padat, atau memakan organisme lain seperti bakteri, jamur atau protozoa lain bersifat heterotrof. Protozoa yang bersifat autotrof dan heterotrof disebut amfitrof (Sugiarto, 2005: 28).
Protozoa yang bersifat heterotrof dan dinding selnya terdiri dari suatu membran tipis, mengambil makanannya dengan cara membungkus makanan kemudian menelannya ke dalam sitoplasma. Cara ini disebut fagositosis. Pada jenis yang berdinding tebal (petikula), cara mengambil mangsanya dengan menggunakan mulut sel yang disebut cytostome, dan biasanya dilengkapi cilia untuk mengalirkan air hingga bila ada makanan yang lewat dapat ditangkap dan dimasukkan ke dalam sitoplasma (Sugiarto, 2005: 28).
Makanan yang masuk ke dalam sitoplasma bersama air akan ditempatkan dalam suatu rongga kecil yang disebut gastriola (vakuola makanan). Makanan di dalam gastriola dicerna secara enzimatis. Hasil pencernaan disebarkan ke seluruh bagian protoplasma dengan proses dengan proses pynocytose, sedangkan sisa pencernaan dibuang melalui lubang sementara pada membrane sel; pada flagelata dan ciliata adakalanya terdapat lubang permanen yang disebut cytopyge atau cytoproct. Kelebihan air dalam sel akan dikeluarkan oleh organel yang disebut vakuola kontraktil dengan gerakan sistol dan diastolnya. Dalam suatu sel protozoa biasanya ditemukan beberapa vakuola kontraktil yang terdapat dekat dinding sel. Vakuola kontraktil pada protozoa yang hidup di air tawar berkembang dengan baik, sedangkan yang di laut kurang berkembang (Sugiarto, 2005: 28-29).
Sampai saaat ini diperkirakan ada 50.000 spesies protozoa yang sudah diidentifikasi. Habitat hidupnya di laut, air payau, air tawar dan daratan yang lembab maupun pasir kering. Diantaranya banyak yang hidup bebas dan merupakan makanan bagi organisma dari tingkatan yang lebih tinggi. Beberapa jenis flagelata dan ciliate merupakan makanan bagi anak ikan. Akan tetapi banyak juga yang hidup sebagai parasit baik pada hewan, tumbuhan maupun pada manusia. Parasit pada ikan antara lain Trichodina dan Ichthyophthirius dari kelas ciliate, serta Heneguya dari kelas Myxosporea. Adapula jenis protozoa yang dapat menghasilkan racun seperti Pyrodinium bahamense yang diduga sebagai penyebab red tide atau pasang merah di berbagai pantai daerah Indopasifik, misalnya India, Thailand, Singapura, Sabah, Philipina, Indonesia, dan Australia. Disamping itu ada juga jenis protozoa yang dapat digunakan untuk mencegah serangan protozoa jenis tertentu. Misalnya Tetrahymena pyriformis digunakan sebagai vaksin pencegah serangan jenis Ichthyophthirius multifiliis (Anonim, 2010).
Secara umum sistem pergerakan, bentuk tubuh respirasi dan laju metabolism protozoa ialah :
1. System respirasi protozoa dilakukan oleh seluruh permukaan tubuhnya.
Sistem ekskresi protozoa adalah berupa vakuola berdenyut (vakuola kontraktif). Vakuola kontraktif berfungi mengeluarkan ampas metabolism dan mengatur tekanan (osmoregulator).
2. Bentuk tubuh Biasanya berkisar 10-50 μm, tetapi dapat tumbuh sampai 1 mm, dan mudah dilihat di bawah mikroskop. Mereka bergerak di sekitar dengan cambuk seperti ekor disebut flagela. Mereka sebelumnya jatuh di bawah keluarga Protista. Lebih dari 30.000 jenis telah ditemukan. Protozoa terdapat di seluruh lingkungan berair dan tanah, menduduki berbagai tingkat trophic. Tubuh protozoa amat sederhana, yaitu terdiri dari satu sel tunggal (unisel). Namun demikian, Protozoa merupakan system yang serba bisa. Semua tugas tubuh dapat dilakukan oleh satu sel saja tanpa mengalami tumpang tindih. Ukuaran tubuhnya antaran 3-1000 mikron.Bentuk tubuh macam-macam ada yang seperti bola, bulat memanjang, atau seperti sandal bahkan ada yang bentuknya tidak menentu. Juga ada memiliki fligel atau bersilia.
3. Alat Gerak atau system gerak protozoa yakni protozoa ada yang bergerak secara aktif dengan alat geraknya tetapi ada juga yang tidak memiliki alat gerak. Alat gerak pada protozoa yaitu kaki semu (pseudopodia), rambut getar (silia) dan bulu cambuk (flagel atau mastix).
Protozoa dibagi menjadi 4 kelas berdasarkan alat gerak:
Rhizopoda (Sarcodina),alat geraknya berupa pseudopoda (kaki semu) Bergerak dengan kaki semu (pseudopodia)yang merupakan penjuluran protoplasma sel. Hidup di air tawar, air laut, tempat-tempat basah, dan sebagian ada yang hidup dalam tubuh hewan atau manusia.Jenis yang paling mudah diamati adalah Amoeba.Ektoamoeba adalah jenis Amoeba yang hidup di luar tubuh organisme lain (hidup bebas), contohnya Ameoba proteus, Foraminifera, Arcella, Radiolaria.Entamoeba adalah jenis Amoeba yang hidup di dalam tubuh organisme, contohnya Entamoeba histolityca, Entamoeba coli.
• Amoeba proteus memiliki dua jenis vakuola yaitu vakuola makanan dan vakuola kontraktil.
• Entamoeba histolityca menyebabkan disentri amuba (bedakan dengan disentri basiler yang disebabkan Shigella dysentriae)
• Entamoeba gingivalis menyebabkan pembusukan makanan di dalam mulut radang gusi (Gingivitis)
• Foraminifera sp. fosilnya dapat dipergunakan sebagai petunjuk adanya minyak bumi. Tanah yang mengandung fosil fotaminifera disebut tanah globigerina.
• Radiolaria sp. endapan tanah yang mengandung hewan tersebut digunakan untuk bahan penggosok.
Flagellata (Mastigophora),alat geraknya berupa nagel (bulu cambuk).Bergerak dengan flagel (bulu cambuk) yang digunakan juga sebagai alat indera dan alat bantu untuk menangkap makanan. Dibedakan menjadi 2 (dua), yaitu : Fitoflagellata Flagellata autotrofik (berkloroplas), dapat berfotosintesis. Contohnya : Euglena viridis, Noctiluca milliaris, Volvox globator.Zooflagellata. Flagellata heterotrofik (Tidak berkloroplas).Contohnya : Trypanosoma gambiens, Leishmania Dibagi menjadi 2 kelompok, yaitu:
• Golongan phytonagellata
- Euglena viridis (makhluk hidup peralihah antara protozoadengan ganggang) - Volvax globator (makhluh hidup peralihah antara protozoa dengan ganggang) - Noctiluca millaris (hidup di laut dan dapat mengeluarkan cahaya bila terkena rangsangan mekanik)
• Golongan Zooflagellata, contohnya :
- Trypanosoma gambiense & Trypanosoma rhodesiense. Menyebabkan penyakit tidur di Afrika dengan vektor (pembawa) Þ lalat Tsetse (Glossina sp.) Trypanosoma gambiense vektornya Glossina palpalis Þ tsetse sungai Trypanosoma rhodeslense vektornya Glossina morsitans Þ tsetse semak - Trypanosoma cruzl Þ penyakit chagas - Trypanosoma evansi Þ penyakit surra, pada hewan ternak(sapi). - Leishmaniadonovani Þ penyakit kalanzar - Trichomonas vaginalis Þ penyakit keputihan
Ciliata (Ciliophora),alat gerak berupa silia (rambut getar). Anggota Ciliata ditandai dengan adanya silia (bulu getar) pada suatu fase hidupnya, yang digunakan sebagai alat gerak dan mencari makanan. Ukuran silia lebih pendek dari flagel.Memiliki 2 inti sel (nukleus), yaitu makronukleus (inti besar) yang mengendalikan fungsi hidup sehari-hari dengan cara mensisntesis RNA, juga penting untuk reproduksi aseksual, dan mikronukleus (inti kecil) yang dipertukarkan pada saat konjugasi untuk proses reproduksi seksual. Ditemukan vakuola kontraktil yang berfungsi untuk menjaga keseimbangan air dalam tubuhnya. Banyak ditemukan hidup di laut maupun di air tawar. Contoh : Paramaecium caudatum, Stentor, Didinium, Vorticella, Balantidium coli .[4]
• Paramaecium caudatum Þ disebut binatang sandal, yang memiliki dua jenis vakuola yaitu vakuola makanan dan vakuola kontraktil yang berfungsi untuk mengatur kesetimbangan tekanan osmosis (osmoregulator).
Memiliki dua jenis inti Þ Makronukleus dan Mikronukleus (inti reproduktif). Cara reproduksi, aseksual Þ membelah diri, seksual Þ konyugasi.
• Balantidium coli Þ menyebabkan penyakit diare.
Sporozoa,adalah protozoa yang tidak memiliki alat gerak. Cara bergerak hewan ini dengan cara mengubah kedudukan tubuhnya. Pembiakan secara vegetatif (aseksual) disebut juga Skizogoni dan secara generatif (seksual) disebut Sporogoni.Marga yang berhubungan dengan kesehatan manusia Þ Toxopinsma dan Plasmodium.. Tidak memiliki alat gerak khusus, menghasilkan spora (sporozoid) sebagai cara perkembang biakannya. Sporozoid memiliki organel-organel kompleks pada salah satu ujung (apex) selnya yang dikhususkan untuk menembus sel dan jaringan inang.Hidupnya parasit pada manusia dan hewan.Contoh : Plasmodium falciparum, Plasmodium malariae,Plasmodium vivax. Gregarina. [4]
Jenis-jenisnya antara lain:
• Plasmodiumfalciparum Þ malaria tropika Þ sporulasi tiap hari
• Plasmodium vivax Þ malaria tertiana Þ sporulasi tiap hari ke-3(48 jam)
• Plasmodium malariae Þ malaria knartana Þ sporulasi tiap hari ke-4 (72 jam)
• Plasmodiumovale Þ malaria ovale [5]
KESIMPULAN
Adapun kesimpulan yang dapat diambil dari praktikum ini adalah sebagai berikut;
1. Berdasarkan struktur dan alat geraknya atau berdasarkan fase yang dominan selama siklus hidupnya, protozoa terdiri dari; Sarcodina atau Rhizopoda, Magitisphora atau Flagellata, Sporozoa, Ciliata atau Infuzoria, dan, Suctoria.
2. Protozoa terdiri dari protoplasma yang di bungkus membran sel yang berfungsi sebagai dinding sel. Protoplasma terdiri dari dua komponen utama yaitu inti sel (nukleus) dan isi sel atau sitoplasma.
DAFTAR PUSTAKA
Suwignyo, Sugiarji, dkk. Avertebrata jilid I. Bogor: Penebar Swadaya. 2005
Jasin, Maskoeri. Zoologi Invertebrata. Surabaya: Sinar Wijaya. 1984
http://id.shvoong.com/exact-sciences/2004732-sistem-perkembangbiakan-respirasi-ekskresi-dan/#ixzz1ajk4GwGZ
http://id.wikipedia.org/wiki/Protozoa
1. Protozoa digolongkan dalam kelompok protista, mengapa demikian?
Karena protozoa memiliki anggota yang hamper seluruhnya tergolong dalam protista, protozoa memiliki cirri-ciri yang sama dengn protista, yaitu tubuhnya terdiri atas satu sel dan eukariotik. Memiliki ciri-ciri umum: organisme unisellular (bersel tunggal), eukariotik (memiliki membrane nukleus), hidup soliter (sendiri) atau berkoloni (kelompok), umumnya tidak dapat membuat makanan sendiri (heterotrof), hidup bebas, saprofit atau parasit, alat gerak berupa pseudopodia, silia, atau flagella.
2. Fungsi ekologis protozoa
Peran yang menguntungkan:
1. Mengendalikan populasi bakteri, sebagian protozoa memangsa bakteri sebagai makanannya, sehingga dapat mengontrol jumlah populasi bakteri di alam.
2. Indikator minyak bumi, contoh Foraminifera.
Fosil Foraminifera menjadi petunjuk sumber minyak, gas, dan mineral.
3. Sumber makanan ikan. Di perairan sebagian protozoa berperan sebagai plankton (zooplankton) dan benthos yang menjadi makanan hewan air, terutama udang, kepiting, ikan, dll. Contoh Euglena dan Paramecium.
4. Bahan penggosok, endapan radiolaria di dasar laut yang membentuk tanah radiolaria, dapat dijadikan sebagai bahan penggosok.
Peran yang merugikan:
Protozoa dapat menjadi penyebab terjadinya sumber penyakit, antara lain: Disentri: Entamoeba histolytica, Diare (Balantidiosis): Balantidium coli, Penyakit tidur (Afrika): Trypanosoma gambiense, Toksoplasmosis (kematian janin), Toksoplasma gandii: Malaria tertian, Plasmodium vivax: Malaria quartana: Plasmodium malariae: Malaria tropika: Plasmodium falciparum.
Parasit: Fasciola hepatica (cacing hati), Chlonorchis sinensis, hidup pada daging ikan air tawar (inang sementara), Schistosoma mansoni, hidup dalam darah, Fasciolopsis buski, hidup dalam usus, Paragonimus westermani, hidup dalam paru-paru. [http://tedbio.multiply.com/journal/item//11/invertebrate. diakses tgl 11 oktober 2010]
3. Apa alasannya hewan terkecil dan terbesar di dunia hidup di air.
Hewan terbesar dan terkecil dapat hidup di air karena di daerah perairan banyak terdapat mineral-mineral dan zat-zat penting yang tidak ada di daratan. Organisme yang hidup di perairan dapat berkembang maksimal karena lebih banyak mendapatkan zat-zat atau unsure hara yang penting untuk diperlukan oleh tubuh dan memiliki ruang gerak yang luas.
PROTOZOA (Paramecium sp)
(Praktikum Avertebrata Air)
Oleh
Alwan Tholifin
0814111024
PROGRAM STUDI BUDIDAYA PERAIRAN
FAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS LAMPUNG
2011
